Choose the experimental features you want to try

This document is an excerpt from the EUR-Lex website

Document C(2025)448

ROZPORZĄDZENIE KOMISJI (UE) …/… zmieniające rozporządzenie (WE) nr 865/2006 w odniesieniu do zmian w ramach Konwencji o międzynarodowym handlu dzikimi zwierzętami i roślinami gatunków zagrożonych wyginięciem oraz możliwości wydawania zezwoleń z mocą wsteczną

C/2025/0448 final

ROZPORZĄDZENIE KOMISJI (UE) …/…

z dnia 28.1.2025 r.

zmieniające rozporządzenie (WE) nr 865/2006 w odniesieniu do zmian w ramach Konwencji o międzynarodowym handlu dzikimi zwierzętami i roślinami gatunków zagrożonych wyginięciem oraz możliwości wydawania zezwoleń z mocą wsteczną

KOMISJA EUROPEJSKA,

uwzględniając Traktat o funkcjonowaniu Unii Europejskiej,

uwzględniając rozporządzenie Rady (WE) nr 338/97 z dnia 9 grudnia 1996 r. w sprawie ochrony gatunków dzikiej fauny i flory w drodze regulacji handlu nimi 1 , w szczególności jego art. 19 ust. 4,

a także mając na uwadze, co następuje:

(1)W rozporządzeniu Komisji (WE) nr 865/2006 2 ustanowiono przepisy wdrażające rozporządzenie wykonawcze (WE) nr 338/97 i zapewniające pełną zgodność z postanowieniami Konwencji o międzynarodowym handlu dzikimi zwierzętami i roślinami gatunków zagrożonych wyginięciem (CITES) („Konwencja”).

(2)Niektóre rezolucje przyjęto na 19. sesji Konferencji Stron Konwencji („CoP19”) w Panamie w Republice Panamy w dniach 14–25 listopada 2022 r., a decyzje podjęto i zalecenia wydano na 75. i 77. posiedzeniu Stałego Komitetu CITES.

(3)W szczególności na CoP19 uzgodniono pewne zmiany w rezolucji Konferencji 10.16 (Rev. CoP19) zmieniające definicję stada hodowlanego. Zmiany te należy włączyć do prawa Unii.

(4)Zaktualizowano także wykaz standardowych źródeł nomenklatury załączony do rezolucji Konferencji 12.11 (Rev. CoP19), który należy stosować do podawania naukowych nazw gatunków w zezwoleniach i świadectwach. Należy uwzględnić te zmiany w załączniku VIII do rozporządzenia (WE) nr 865/2006.

(5)Decyzję CoP19 w sprawie zmiany nomenklatury należy również uwzględnić w załączniku X do rozporządzenia (WE) nr 865/2006.

(6)Na CoP19 zmieniono rezolucję Konferencji 12.3 w odniesieniu do różnych celów transakcji i kodów, które należy stosować do określania tych celów. Należy uwzględnić te zmiany w art. 5c rozporządzenia (WE) nr 865/2006 oraz w załączniku IX do tego rozporządzenia. W szczególności rezolucję Konferencji 12.3 zmieniono poprzez dodanie definicji do kodów celu transakcji Z, M, E, N i L. Definicje te należy włączyć do załącznika IX do rozporządzenia (WE) nr 865/2006. 

(7)Na 75. i 77. posiedzeniu Stałego Komitetu CITES dokonano także przeglądu wytycznych dotyczących składania sprawozdań rocznych. Obejmują one zmienione kody i jednostki miary, które należy wykorzystywać do opisu okazów w zezwoleniach i świadectwach. Zmienione kody i jednostki miary należy uwzględnić w załączniku VII do rozporządzenia (WE) nr 865/2006.

(8)W rezolucji Konferencji 11.17 (Rev. CoP19) ustalono termin składania sprawozdań z realizacji na dzień 31 października roku poprzedzającego każdą Konferencję Stron Konwencji. Należy zmienić art. 69 rozporządzenia (WE) nr 865/2006 w taki sposób, aby wszystkie wewnątrzunijne terminy składania sprawozdań przez państwa członkowskie przypadały w dniu 15 czerwca, tak aby Komisja mogła wypełnić swój obowiązek sprawozdawczy wobec Sekretariatu Konwencji do dnia 31 października danego roku. Nowa zmiana dotycząca składania sprawozdań z realizacji wyjaśnia odniesienie do art. 15 ust. 4 lit. c) rozporządzenia (WE) nr 338/97.

(9)W celu wdrożenia rezolucji Konferencji 12.10 (Rev. CoP15) i zaleceń przyjętych przez Stały Komitet CITES na 77. posiedzeniu należy zmienić niektóre przepisy i załączniki, a do rozporządzenia (WE) nr 865/2006 należy dodać dalsze przepisy i nowy załącznik XIV.

(10)W rezolucji Konferencji 12.10 (Rev. CoP15) stanowi się, że zwolnienie, o którym mowa w art. VII ust. 4 Konwencji, należy wdrożyć poprzez zarejestrowanie przez Sekretariat Konwencji hodowli w niewoli do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji.

(11)Na 77. posiedzeniu Stałego Komitetu CITES ustalono, że art. III i art. VII ust. 4 Konwencji nie są skutecznie wdrażane przez Unię w odniesieniu do rejestracji hodowli w niewoli do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I.

(12)Stały Komitet CITES wezwał organy administracyjne CITES Unii do zapewnienia, aby przedsiębiorstwa, w których w niewoli do celów handlowych hodowane są okazy gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji, były rejestrowane w Sekretariacie Konwencji zgodnie z procedurami ustanowionymi w rezolucji Konferencji 12.10 (Rev. CoP15).

(13)Stały Komitet CITES wezwał również strony Konwencji do ograniczenia przywozu głównie do celów handlowych okazów zwierząt wyhodowanych w niewoli, wymienionych w załączniku I do Konwencji, do okazów pochodzących z hodowli zarejestrowanych w Sekretariacie Konwencji oraz do odrzucania wszelkich zezwoleń lub świadectw wydanych na podstawie art. VII ust. 4, jeżeli przedmiotowe okazy nie pochodziły z zarejestrowanego przedsiębiorstwa.

(14)Biorąc pod uwagę potencjalnie dużą liczbę wniosków o rejestrację hodowli w Sekretariacie Konwencji oraz czas potrzebny na rozpatrzenie wniosków przez organy krajowe i Sekretariat Konwencji, należy odroczyć stosowanie przepisów dotyczących wydawania zezwoleń i świadectw na potrzeby przywozu, wywozu oraz powrotnego wywozu do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji, urodzonych i hodowanych w niewoli.

(15)Ponadto w wyjątkowych przypadkach, w odniesieniu do legalnie wywiezionych martwych okazów wymienionych w załączniku B do rozporządzenia (WE) nr 338/97, właściwe organy powinny, ze względu na zasadę proporcjonalności, mieć możliwość wydania zezwolenia na przywóz z mocą wsteczną, jeżeli istnieją dowody popełnienia autentycznej pomyłki i jeżeli poza tym transakcja jest zgodna z rozporządzeniem (WE) nr 338/97, Konwencją i odpowiednimi przepisami kraju wywozu.

(16)Należy zatem odpowiednio zmienić rozporządzenie (WE) nr 865/2006.

(17)Środki określone w niniejszym rozporządzeniu są zgodne z opinią Komitetu ds. Handlu Dziką Fauną i Florą,

PRZYJMUJE NINIEJSZE ROZPORZĄDZENIE:

Artykuł 1

W rozporządzeniu (WE) nr 865/2006 wprowadza się następujące zmiany:

1)art. 1 pkt 3 otrzymuje brzmienie:

„3) »stado hodowlane« oznacza wszystkie zwierzęta w hodowli, które były lub są wykorzystywane do reprodukcji;”;

2)art. 5c ust. 1 otrzymuje brzmienie:

„1.

Cel transakcji wskazuje się przy pomocy jednego z kodów w pkt 1 załącznika IX do niniejszego rozporządzenia. W przypadku gdy aspekty niehandlowe nie są wyraźnie dominujące, stosuje się kod T celu transakcji, z wyjątkiem przypadków, gdy istnieje alternatywny kod, który dokładniej odzwierciedla charakter transakcji między (re)eksporterem a importerem lub wykorzystanie zamierzone przez importera, w którym to przypadku stosuje się ten inny kod.

W przypadku gdy niehandlowe aspekty transakcji są wyraźnie dominujące, stosuje się kod, który najlepiej opisuje charakter transakcji lub zamierzone wykorzystanie.” ;

3)art. 15 ust. 2 akapit drugi otrzymuje brzmienie:

„W odniesieniu do okazów przywiezionych lub (powrotnie) wywiezionych jako dobra osobiste lub majątek gospodarstwa domowego – do których stosują się przepisy rozdziału XIV – oraz w odniesieniu do żywych zwierząt będących własnością prywatną, legalnie nabytych i przetrzymywanych do osobistych celów niehandlowych, oraz – w wyjątkowych przypadkach – w odniesieniu do przywiezionych martwych okazów wymienionych w załączniku B do rozporządzenia (WE) nr 338/97, które są legalnie wywiezione, odstępstwo określone w ust. 1 obowiązuje również, jeżeli właściwy organ zarządzający państwa członkowskiego, po konsultacji z właściwym organem egzekwującym prawo, jest przekonany, że istnieją dowody na to, iż popełniono rzeczywisty błąd, a nie próbowano dokonać oszustwa, zaś przywóz lub (powrotny) wywóz danych okazów jest poza tym zgodny z przepisami rozporządzenia (WE) nr 338/97, postanowieniami Konwencji i odpowiednimi przepisami kraju wywozu. Odstępstwo to nie obowiązuje, jeżeli importer lub (re)eksporter wcześniej popełnił podobną pomyłkę.”;

4)w art. 20 dodaje się ustęp 5 w brzmieniu:

„5. W odniesieniu do wniosków o zezwolenia na przywóz do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji, urodzonych i hodowanych w niewoli po dniu 31 grudnia 2026 r., wnioskodawca wykazuje organowi zarządzającemu, że okaz pochodzi z hodowli zarejestrowanej przez Sekretariat Konwencji w odniesieniu do tego gatunku jako hodowla w niewoli do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji.”;

5)w art. 26 dodaje się ust. 4a w brzmieniu:

„4a. W odniesieniu do wniosków o wydanie zezwolenia na przywóz i świadectwa powrotnego wywozu do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji, urodzonych i hodowanych w niewoli, złożonych po dniu 31 grudnia 2026 r., wnioskodawca wykazuje organowi zarządzającemu, że okaz pochodzi z hodowli zarejestrowanej przez Sekretariat Konwencji w odniesieniu do tego gatunku jako hodowla w niewoli do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji.”;

6)nagłówek rozdziału XIII otrzymuje brzmienie:

„OKAZY URODZONE I HODOWANE W NIEWOLI, OKAZY SZTUCZNIE ROZMNAŻANE ORAZ REJESTRACJA HODOWLI W NIEWOLI DO CELÓW HANDLOWYCH OKAZÓW GATUNKÓW ZWIERZĄT WYMIENIONYCH W ZAŁĄCZNIKU I DO KONWENCJI”;

7)dodaje się art. 54a w brzmieniu:

„Artykuł 54a

Rejestracja hodowli w niewoli do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji

1)W celu zarejestrowania w Sekretariacie Konwencji hodowli jako hodowla w niewoli do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji osoba fizyczna lub prawna odpowiedzialna za hodowlę („podmiot”) składa wniosek o rejestrację do organu zarządzającego państwa członkowskiego, w którym znajduje się hodowla. Wniosek zawiera informacje określone w załączniku XIV i wykazuje, że hodowla spełnia wszystkie następujące wymogi:

a)stado hodowlane zostało utworzone zgodnie z postanowieniami Konwencji i odpowiednimi przepisami państwa członkowskiego, w którym znajduje się dana hodowla, w sposób niewywierający negatywnego wpływu na przetrwanie danych gatunków żyjących w środowisku naturalnym;

b)okazy wyhodowane w hodowli kwalifikują się jako „urodzone i hodowane w niewoli” zgodnie z niniejszym rozdziałem;

c)podmiot zapewnia stosowanie odpowiedniego i bezpiecznego systemu znakowania w celu jednoznacznej identyfikacji wszystkich stad hodowlanych i okazów będących przedmiotem handlu zgodnie z art. 66;

d)hodowla nadal wnosi istotny wkład w oparciu o potrzeby w zakresie ochrony danego gatunku.

2)Organ zarządzający może przedłożyć Sekretariatowi Konwencji wniosek o rejestrację, jeżeli – po konsultacji z organem naukowym – stwierdzi, że wszystkie informacje określone w załączniku XIV zostały dostarczone, spełnione są wymogi rejestracji określone w ust. 1 oraz nie istnieją inne czynniki związane z ochroną gatunków uniemożliwiające rejestrację.

Rejestracja staje się skuteczna, gdy hodowla jest uwzględniona w rejestrze hodowli w niewoli do celów handlowych okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji, prowadzonym przez Sekretariat Konwencji („rejestr”).

3)W przypadku zmiany charakteru hodowli lub rodzajów produktów wytwarzanych na potrzeby wywozu, podmiot powiadamia organ zarządzający w celu umożliwienia aktualizacji informacji zawartych w rejestrze.

4)Organ zarządzający, w porozumieniu z organem naukowym, zwraca się do Sekretariatu Konwencji o wykreślenie z rejestru hodowli w jego jurysdykcji na wniosek podmiotu lub jeżeli dowie się, że co najmniej jeden wymóg dotyczący rejestracji, o którym mowa w ust. 1, nie jest już spełniany. Od dnia złożenia wniosku przez organ zarządzający nie wydaje się w odniesieniu do tej hodowli zezwoleń na wywóz ani świadectw powrotnego wywozu dla okazów gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji.

Rejestracja traci ważność z chwilą usunięcia hodowli z rejestru przez Sekretariat Konwencji.”;

8)w art. 65 ust. 4 otrzymuje brzmienie:

„4. Zezwolenia na wywóz są wydawane dla żywych kręgowców należących do gatunków wymienionych w załączniku A do rozporządzenia (WE) nr 338/97 wyłącznie jeśli wnioskodawca wykaże przed właściwym organem zarządzającym, że stosowne wymagania określone w art. 66 niniejszego rozporządzenia są spełnione. Nie ma to zastosowania do okazów gatunków wymienionych w załączniku X do niniejszego rozporządzenia, chyba że:

a) adnotacja w załączniku X nakazuje znakowanie;

b) okazy były hodowane w hodowli wpisanej do rejestru.”;

9)w art. 66 ust. 1 otrzymuje brzmienie:

„1. Dla celów art. 33 ust. 1, art. 40 ust. 1, art. 54a, art. 59 ust. 5 oraz art. 65 ust. 4 zastosowanie mają przepisy ust. 2 i 3 niniejszego artykułu.”;

10)art. 69 otrzymuje brzmienie:

„Artykuł 69

Sprawozdania na temat przywozu, wywozu i powrotnego wywozu oraz realizacji

1. Państwa członkowskie gromadzą dane na temat przywozu oraz wywozu i powrotnego wywozu z terytorium Unii, który ma miejsce na podstawie zezwoleń i świadectw wydawanych przez ich organ zarządzający, niezależnie od rzeczywistego miejsca wprowadzenia lub (powrotnego) wywozu.

Państwa członkowskie, zgodnie z art. 15 ust. 4 lit. a) rozporządzenia (WE) nr 338/97, przekazują Komisji informacje za dany rok kalendarzowy w terminie określonym w ust. 6 niniejszego artykułu dla gatunków wymienionych w załączniku A, B i C do rozporządzenia (WE) nr 338/97, w formie elektronicznej oraz zgodnie z wytycznymi w sprawie przygotowania i składania rocznych sprawozdań CITES wydanymi przez Sekretariat Konwencji.

2. Informacje, o których mowa w ust. 1, są przedstawiane w dwóch odrębnych częściach:

a)części dotyczącej przywozu, wywozu i powrotnego wywozu okazów gatunków wymienionych w załącznikach do Konwencji;

b)części dotyczącej przywozu, wywozu i powrotnego wywozu okazów innych gatunków wymienionych w załącznikach A, B i C do rozporządzenia (WE) nr 338/97 oraz dotyczącej wprowadzania na terytorium Unii okazów gatunków wymienionych w załączniku D do tego rozporządzenia.

3. W odniesieniu do przywozu przesyłek zawierających żywe zwierzęta państwa członkowskie, tam gdzie to możliwe, prowadzą rejestry procentowej ilości okazów gatunków wymienionych w załącznikach A i B do rozporządzenia (WE) nr 338/97, które były martwe w momencie wprowadzenia do Unii.

4.    Informacje, o których mowa w art. 15 ust. 4 lit. c) rozporządzenia (WE) nr 338/97, obejmują szczegóły dotyczące środków ustawodawczych, wykonawczych i administracyjnych podjętych w celu wdrożenia i wykonania rozporządzenia (WE) nr 338/97 oraz niniejszego rozporządzenia.

Państwa członkowskie przedstawiają również sprawozdania na temat:

a)zarejestrowanych podmiotów zgodnie z art. 18 i 19 niniejszego rozporządzenia;

b)zarejestrowanych instytucji zgodnie z art. 60 niniejszego rozporządzenia;

c)zatwierdzonych hodowców zgodnie z art. 63 niniejszego rozporządzenia;

d)licencjonowanych zakładów zajmujących się przepakowywaniem kawioru zgodnie z art. 66 ust. 7 niniejszego rozporządzenia;

e)stosowania przez nie świadectw fitosanitarnych zgodnie z art. 17 niniejszego rozporządzenia;

f)przypadków wydania zezwoleń na wywóz i świadectw powrotnego wywozu z mocą wsteczną zgodnie z art. 15 niniejszego rozporządzenia.

5. Informacje, o których mowa w ust. 4 zdanie pierwsze, dotyczące trzyletniego okresu kończącego się w dniu 31 grudnia poprzedniego roku przekazuje się w formie skomputeryzowanej i zgodnie z formatem sprawozdania z realizacji wydanym przez Sekretariat Konwencji i zmienionym przez Komisję.

Informacje, o których mowa w ust. 4 akapit drugi, o ile nie są zawarte w powiadomieniu na podstawie art. 15 ust. 4 lit. a) rozporządzenia (WE) nr 338/97 lub w powiadomieniu na podstawie art. 66 ust. 7 niniejszego rozporządzenia, przekazuje się w formie skomputeryzowanej wraz z powiadomieniem na podstawie art. 15 ust. 4 lit. c) rozporządzenia (WE) nr 338/97.

6. Informacje, o których mowa w ust. 1, 2 i 3, są przekazywane Komisji za każdy rok kalendarzowy do dnia 15 czerwca następnego roku w podziale na poszczególne gatunki oraz kraje (powrotnego) wywozu.

Informacje, o których mowa w ust. 4 zdanie pierwsze, są przekazywane Komisji do dnia 15 czerwca roku poprzedzającego rok każdego posiedzenia Konferencji Stron Konwencji.”; 

11)załączniki VII, VIII i IX zastępuje się tekstem znajdującym się w załączniku 1 do niniejszego rozporządzenia;

12)w załączniku X wpis „Psephotus dissimilis” zastępuje się wpisem „Psephotellus dissimilis”;

13)dodaje się załącznik XIV w brzmieniu określonym w załączniku 2 do niniejszego rozporządzenia.

Artykuł 2

Niniejsze rozporządzenie wchodzi w życie dwudziestego dnia po jego opublikowaniu w Dzienniku Urzędowym Unii Europejskiej.

Niniejsze rozporządzenie wiąże w całości i jest bezpośrednio stosowane we wszystkich państwach członkowskich.

Sporządzono w Brukseli dnia 28.1.2025 r.

   W imieniu Komisji

   Przewodnicząca
   Ursula VON DER LEYEN

(1)    Dz.U. L 61 z 3.3.1997, s. 1, ELI: http://data.europa.eu/eli/reg/1997/338/2023-05-20
(2)    Rozporządzenie Komisji (WE) nr 865/2006 z dnia 4 maja 2006 r. ustanawiające przepisy wykonawcze do rozporządzenia Rady (WE) nr 338/97 w sprawie ochrony gatunków dzikiej fauny i flory w drodze regulacji handlu nimi (Dz.U. L 166 z 19.6.2006, s. 1, ELI: http://data.europa.eu/eli/reg/2006/865/oj).
Top

ZAŁĄCZNIK 1

„ZAŁĄCZNIK VII

Kody stosowane w opisie okazów oraz jednostki miary wykorzystywane w zezwoleniach i świadectwach zgodnie z art. 5 pkt 1 i 2

Opis

Kod terminu handlowego

Jednostka zalecana

Jednostka alternatywna

Objaśnienie

Fiszbin

BAL

kg

liczba

elastyczne płyty rogowe zwisające z górnej szczęki fiszbinowców (Mysticeti) i umożliwiające im odżywianie się

Kora

BAR

kg

Kora drzew (surowa, suszona lub sproszkowana; nieprzetworzona)

Ciało

BOD

liczba

kg

Praktycznie całe martwe zwierzęta, w tym całe ryby, wypchane żółwie, spreparowane motyle, gady w alkoholu, całe wypchane trofea myśliwskie itp. Jeżeli dotyczy okazów rekinów i rai (Elasmobranchii spp.), zalecaną jednostką jest kg.

Kość

BON

kg

liczba

Kości, w tym szczęki

Kalipasz

CAL

kg

Kalipasz (chrząstka żółwia na zupę)

Karapaks

CAP

liczba

kg

Surowe lub nieobrobione całe skorupy gatunków Testudines

Rzeźba

CAR

kg

liczba

Rzeźbione wyroby inne niż z kości słoniowej, kości lub rogu – np. z koralu i drewna (w tym rękodzieła).

Uwaga: rzeźby z kości słoniowej powinny być wyszczególnione jako takie (zob. poniżej – „IVC”). Ponadto, w przypadku gatunków, z których można wyrzeźbić więcej niż jeden rodzaj wyrobu (np. z rogu i kości), kod terminu handlowego powinien w miarę możliwości wskazywać rodzaj wyrobu będącego przedmiotem handlu (np. rzeźba z kości – „BOC” lub rzeźba z rogu – „HOC”).

Rzeźba – kość

BOC

kg

liczba

Rzeźba z kości

Rzeźba – róg

HOC

kg

liczba

Rzeźba z rogu

Rzeźba – kość słoniowa (obrobiona kość słoniowa)

IVC

kg

liczba

Rzeźby z kości słoniowej, w tym mniejsze przetworzone kawałki kości słoniowej (np. rękojeści noży, zestawy do gry w szachy, zestawy do gry w madżonga itp.). Uwaga: całe rzeźbione kły należy zgłaszać jako rzeźbę – kość słoniową (IVC), a nie jako kły (zob. „TUS” poniżej). Biżuterię wykonaną z kości słoniowej należy zgłaszać jako „biżuterię – kość słoniową” (zob. IJW poniżej)

Kawior

CAV

kg

Niezapłodnione martwe przetworzone jaja wszystkich gatunków Acipenseriformes; również znane jako ikra.

Zrębki (drzewne)

CHP

kg

Wióry drzewne, zwłaszcza Aquilaria spp., Gyrinops spp. i Pterocarpus santalinus

Pazur

CLA

liczba

kg

Pazury, np. Felidae, Ursidae lub Crocodylia (Uwaga: „pazury żółwia” są zwykle łuskami, a nie prawdziwymi pazurami)

Tkanina

CLO

m2

kg

Tkanina – jeżeli tkanina nie jest wykonana wyłącznie z sierści gatunków CITES, masa sierści właściwego gatunku powinna być zamiast tego, o ile to możliwe, zapisana jako „HAI”.

Koral (surowy)

COR

liczba

kg

Surowy lub nieobrobiony koral i skała koralowa (również żywa skała i podłoże) [zgodnie z definicją rezolucji 11.10 (Rev. CoP15)]. Skałę koralową należy zgłaszać jako „Scleractinia spp.”.

Uwaga: handel powinien być wykazany poprzez liczbę kawałków tylko wtedy, gdy okazy korali są przewożone w wodzie.

Żywą skałę (przewożoną w stanie wilgotnym w skrzyniach) należy zgłaszać w kg; podłoże koralowe należy zgłaszać jako liczbę kawałków (jako że są one przewożone w wodzie jako podłoże, do którego przyczepione są korale nieobjęte CITES)

Kosmetyki

COS

g

ml

Każdy produkt lub mieszanina produktów, które są nakładane wyłącznie na zewnętrzną część ciała (np. skórę, włosy, paznokcie, genitalia, wargi lub zęby lub błony śluzowe jamy ustnej) z zamiarem czyszczenia, nadania zapachu, zmiany wyglądu lub ochrony. Kosmetyki mogą obejmować: produkty do makijażu, perfumy, kremy do skóry, lakiery do paznokci, barwniki do włosów, mydło, szampony, kremy do golenia, dezodoranty, filtry przeciwsłoneczne, pasty do zębów.

Kosmetyki zawierające ekstrakty z gatunków objętych Konwencją CITES. Ilość powinna odzwierciedlać zawartość gatunków objętych Konwencją CITES.

Kultura

CUL

liczba kolb itp.

Kultura (tkankowa) sztucznie rozmnażanych roślin

Produkty pochodne

DER

kg/l

Produkty pochodne (inne niż te, które włączono gdzie indziej w tej tabeli)

Suszona roślina

DPL

liczba

Suszone rośliny – np. okazy zielnikowe

Ucho

EAR

liczba

Uszy – zwykle słonia

Jajo

EGG

liczba

kg

Całe martwe jaja lub wydmuszki (patrz również: „kawior”)

Jajo (żywe)

EGL

liczba

kg

Żywe zapłodnione jaja – zwykle ptaków i gadów, ale również ryb i bezkręgowców

Skorupy jaj

ESH

g/kg

Surowe lub nieobrobione skorupy jaj z wyjątkiem całych jaj

Ekstrakt

EXT

kg

l

Ekstrakt – zwykle ekstrakty (wyciągi) roślinne

Pióro

FEA

kg/liczba skrzydeł

liczba

Pióra – w przypadku przedmiotów (np. obrazów) wykonanych z piór, zapis liczby przedmiotów

Włókno

FIB

kg

m

Włókno naturalne: termin rodzajowy dla kilku rodzajów materiału pochodzenia naturalnego (tj. roślinnego lub zwierzęcego). Włókno zwierzęce można zazwyczaj prząść i tkać; jest na ogół bardzo cienkie i charakteryzuje się dobrą elastycznością – np. włókno pochodzące ze strzyżenia żywych wikunii. Obejmuje również włókna z jelit stosowane do produkcji naciągów rakiet tenisowych.

Płetwa (suszona)

DFN

kg

Suszone płetwy i części płetw (w tym płetwy zwierząt innych niż ryby (flippers))

Płetwa (mokra)

FFN

kg

Świeże, schłodzone lub zamrożone płetwy i części płetw (w tym płetwy zwierząt innych niż ryby (flippers))

Palczaki

FIG

kg

liczba

Żywe młode ryby przeznaczone do handlu akwariowego, akwakultury, wylęgarni, spożycia lub do wypuszczenia na wolność, w tym żywe węgorze europejskie (Anguilla anguilla) o długości do 12 cm

Kwiat

FLO

kg

Kwiaty

Donica kwiatowa

FPT

liczba

Donice wykonane z części rośliny – np. z włókien paproci drzewiastych (Uwaga: żywe rośliny sprzedawane w tak zwanych „wspólnych doniczkach” powinny być rejestrowane jako „żywe rośliny”, nie jako donice)

Żabie udka

LEG

kg

Żabie nogi (udka)

Owoc

FRU

kg

Owoc

Stopa, łapa

FOO

liczba

Stopy, łapy – np. słonia, nosorożca, hipopotama, lwa, krokodyla itp.

Wyroby futrzarskie (duże)

FPL

liczba

Duże wyroby futrzarskie – np. nakrycie z futra niedźwiedzia lub rysia lub inne wyroby futrzarskie o znacznym rozmiarze

Wyrób futrzarski (mały)

FPS

liczba

Małe wyroby futrzarskie – w tym torebki, etui na klucze, portmonetki, poduszki, wykończenia itp.

Żółć

GAL

kg

Żółć

Pęcherzyk żółciowy

GAB

liczba

kg

Pęcherzyk żółciowy

Odzież

GAR

liczba

Odzież – w tym rękawiczki i kapelusze, ale nie buty. Obejmuje wykończenie lub ozdoby na odzieży

Genitalia

GEN

kg

liczba

Wykastrowane narządy i zasuszone penisy

Blaszki skrzelowe

GIL

kg

liczba

Blaszki skrzelowe (np. rekinów)

Podkładka do szczepienia

GRS

liczba

Podkładki do szczepień (bez zrazów)

Sierść

HAI

kg

g

Obejmuje wszelką nieprzetworzoną sierść zwierzęcą, np. słonia, jaka, guanako, wilka, niedźwiedzia, pantery itp.

Wyroby z sierści

HAP

liczba

g

Wyroby wykonane z sierści (np. bransoletki z sierści słonia)

Róg

HOR

liczba

kg

Rogi – obejmuje poroże

Biżuteria

JWL

liczba

g

Biżuteria – w tym bransoletki, naszyjniki i inne rodzaje biżuterii wykonane z materiałów innych niż kość słoniowa (np. drewno, koral itp.)

Biżuteria – kość słoniowa (obrobiona kość słoniowa)

IJW

liczba

g

Biżuteria wykonana z kości słoniowej w tym elementy zwane „ekipa”

Jądro

KNL

kg

Zwane również „bielmem”, „miazgą” lub „koprą”

Wyrób skórzany (duży)

LPL

liczba

Duże wyroby ze skóry – np. teczki, meble, walizki, kufry podróżne

Wyrób skórzany (mały)

LPS

liczba

Małe wyroby ze skóry – np. paski, szelki, siodełka do rowerów, okładki na książeczki czekowe lub karty kredytowe, torebki, etui na klucze, notatniki, portmonetki, buty, kapciuchy na tytoń, portfele, paski do zegarków i wykończenia

Żywe

LIV

liczba

kg

Żywe zwierzęta i rośliny, z wyłączeniem żywych palczaków – zob. FIG

Liść

LVS

kg

liczba

Liście

Kłody

LOG

m3

Wszelkie drewno surowe, nawet pozbawione kory lub bielu, lub zgrubnie obrobione, w celu przetworzenia szczególnie na tarcicę, papierówkę lub fornir. Uwaga: handel kłodami jako surowcami drzewnymi dla specjalnego celu, sprzedawanymi według wagi (np. lignum vitae, Guaiacum spp.), powinien być wykazany w kg.

Mięso

MEA

kg

Mięso, w tym mięso ryb, jeżeli nie jest w całości (zob: „ciało”), świeże lub nieprzetworzone mięso oraz mięso przetworzone (np. wędzone, surowe, suszone, zamrożone lub w puszce)

W przypadku handlu węgorzem przeznaczonym do spożycia przez ludzi należy stosować kod mięsa (MEA).

Lek

MED

kg/l

Lek

Piżmo

MUS

g

Piżmo

Olej

OIL

kg

l

Tłuszcz płynny – np. z żółwi, fok, waleni, ryb, różnych roślin

Perła

PRL

liczba

Perła (np. gatunku Strombus gigas)

Klawisze fortepianowe (obrobiona kość słoniowa)

KEY

liczba

Klawisze fortepianu (lub pianina) wykonane z kości słoniowej (np. standardowy fortepian ma 52 klawisze z kości słoniowej)

Kość – kawałek

BOP

kg

Kawałki kości, nieobrobione

Róg – kawałek

HOP

kg

Kawałki rogu, nieobrobione – obejmuje odłamki

Kość słoniowa – kawałek (surowa kość słoniowa)

IVP

kg

Kawałki kości słoniowej, nieobrobione – obejmuje odłamki

Płaty

PLA

m2

Płaty z kilku skór futrzarskich – obejmuje dywaniki, jeśli zrobione z kilku skór

Sklejka

PLY

m2

m3

Materiał składający się z co najmniej trzech arkuszy drewna połączonych klejem i ściśniętych ze sobą, nałożonych tak, aby włókna poszczególnych warstw przebiegały pod kątem

Proszek

POW

kg

Sucha, stała substancja w postaci cząstek drobnych lub gruboziarnistych

Poczwarki

PUP

liczba

Poczwarki motyli

Korzeń

ROO

liczba

kg

Korzenie, cebule, kłącza lub bulwy

Uwaga: w odniesieniu do taksonów wytwarzających drewno agarowe: Aquilaria spp. i Gyrinops spp. zalecaną jednostką jest kilogram. Jednostką alternatywną jest liczba.

Dywanik

RUG

liczba

Dywaniki

Rostrum ryb piłokształtnych

ROS

liczba

kg

Rostrum ryb piłokształtnych

Tarcica

SAW

m3

Drewno jedynie wzdłużnie przetarte lub wytworzone w procesie łupania wzdłużnego; zwykle przekracza 6 mm grubości. Uwaga: handel tarcicą jako surowcami drzewnymi przeznaczonymi do specjalnego celu, sprzedawanymi według wagi (np. lignum vitae, Guaiacum spp.), powinien być wykazany w kg.

Łuska

SCA

kg

Łuski – np. żółwi, innych gadów, ryb, łuskowców

Nasiono

SEE

kg

Nasiona

Muszla

SHE

liczba

kg

Surowa lub nieobrobiona muszla mięczaków

Bok

SID

liczba

Boki skór; nie obejmuje skór z boków ciał krokodyli – Tinga (patrz „skóra”)

Szkielet

SKE

liczba

W zasadzie całe szkielety

skóra

SKI

liczba

W zasadzie całe skóry, surowe lub garbowane, w tym skóry, skóry z boków ciał krokodyli – Tinga, zewnętrzne pokrycie ciała, z łuskami lub bez

Kawałek skóry

SKP

kg

liczba

Kawałki skóry – w tym skrawki, surowe lub garbowane

Czaszka

SKU

liczba

Czaszki

Zupa

SOU

kg

l

Zupa – np. z żółwia

Okaz (naukowy)

SPE

kg/l/ml/liczba

Okazy naukowe – włączając w to krew, tkanki, (np. nerka, śledziona itp.), preparaty histologiczne, zakonserwowane okazy muzealne itp.

Łodyga

STE

liczba

kg

Łodygi roślin

Uwaga: w odniesieniu do taksonów wytwarzających drewno agarowe: Aquilaria spp. i Gyrinops spp. zalecaną jednostką jest kilogram. Jednostką alternatywną jest liczba.

Pęcherz pławny

SWI

kg

Organ hydrostatyczny, włączając w to karuk/klej z jesiotra

Ogon

TAI

liczba

kg

Ogony – np. kajmana (na skórę) lub lisa (na wykończenie odzieży, kołnierze, boa itp.), w tym również płetwy ogonowe waleni

Nić

THD

kg

Nić – przetworzone długie pasmo kilku włosów lub włókien pochodzenia naturalnego (np. roślinnego lub zwierzęcego), np. wikuna, guanako

Ząb

TEE

liczba

kg

Zęby – np. wieloryba, lwa, hipopotama, krokodyla itp.

Drewno

TIM

m3

kg

Surowe drewno z wyjątkiem kłód, tarcicy i drewna przetworzonego

Drewno przetworzone

TRW

m3

kg

Zgodnie z definicją w kodzie zharmonizowanego systemu 44.09: drewno (włącznie z klepkami i listwami na parkiet, niepołączonymi), kształtowane w sposób ciągły (z wypustem, rowkiem, ze ściętymi krawędziami, zaokrąglone, ze złączami w jaskółczy ogon i tym podobne) wzdłuż dowolnej krawędzi, końców lub powierzchni, nawet strugane, szlifowane lub łączone stykowo.

Trofeum

TRO

liczba

Trofeum – wszystkie części jednego zwierzęcia stanowiące trofea, jeżeli są wywożone razem: np. rogi (2), czaszka, głowa, skóra z głowy i szyi (na medalion), skóra z części grzbietowej, ogon i stopy (tj. dziesięć okazów) stanowią jedno trofeum. Lecz jeśli na przykład czaszka i rogi są jedynymi okazami ze zwierzęcia, które są wywożone, wtedy pozycje te powinny być wykazane jako jedno trofeum.

W przeciwnym razie pozycje te powinny być wykazane oddzielnie. Całe, wypchane ciało jest wykazane jako „BOD”. Sama skóra jest wykazana jako „SKI”. Handel trofeami w postaci całych zwierząt, połówek zwierząt lub medalionów, wraz z odpowiadającymi im częściami tego samego zwierzęcia, wywożonymi razem w ramach tego samego pozwolenia, należy zgłaszać jako „1 TRO”.

Trąba

TRU

liczba

kg

Trąba słonia. Uwaga: trąbę słonia wywożoną wraz z innymi elementami trofeum z tego samego zwierzęcia w ramach tego samego pozwolenia jako część trofeum myśliwskiego należy zgłaszać jako „TRO”.

Kieł (surowa kość słoniowa)

TUS

liczba

kg

W zasadzie całe kły, nieobrobione. Obejmują kły słonia (ciosy), hipopotama, morsa, narwala (siekacze), ale nie inne zęby. Uwaga: całe rzeźbione kły należy zgłaszać jako rzeźbę – kość słoniową (zob. „IVC” powyżej).

Fornir

fornir obwodowo skrawany

fornir płasko skrawany

VEN

VEN

m3

m2

kg

kg

Cienkie warstwy lub płaty drewna o jednolitej grubości, zwykle 6 mm lub mniej, zwykle złuszczane (fornir obwodowo skrawany) lub ścinane (fornir płasko skrawany), używane przy wyrobie sklejki, mebli okleinowych, opakowań okleinowych itp.

Wosk

WAX

kg

Wosk

Wyrób drewniany

WPR

liczba

kg

Wyroby drewniane, w tym gotowe wyroby drewniane takie jak meble i instrumenty muzyczne



Legenda do jednostek miar

Jednostka miary

Kod jednostki

gramy

g

kilogramy

kg

litry

l

centymetry sześcienne

cm3

mililitry

ml

metry

m

metry kwadratowe

m2

metry sześcienne

m3

liczba okazów

liczba

Uwaga: jeżeli nie wskazano jednostki miary, zakłada się, że jednostką jest liczba (np. żywych zwierząt).



ZAŁĄCZNIK VIII

Standardowe źródła nomenklatury, którą należy stosować zgodnie z art. 5 pkt 4 w celu podania naukowych nazw gatunków w zezwoleniach i świadectwach

FAUNA

Przedmiotowy takson

Odniesienie taksonomiczne

MAMMALIA

Wszystkie taksony MAMMALIA

- z wyjątkiem uznania następujących nazw dzikich odmian gatunków (zamiast nazw nadanych udomowionym odmianom): Bos gaurus, Bos mutus, Bubalus arnee, Equus africanus, Equus przewalskii, oraz

- z wyjątkiem taksonów wyszczególnionych w różnych rzędach Mammalia poniżej

Wilson, D. E., Reeder, D. M. (red.) (2005). Mammal Species of the World. A Taxonomic and Geographic Reference. Wydanie trzecie, tom 1–2, xxxv + 2142 s., Baltimore (John Hopkins University Press).

ARTIODACTYLA

Bovidae

Ovis spp.

Valdez, R. i Weinberg, P.J. (2011). Species accounts 188-207 for Ovis spp., s. 727–739 w Wilson, D.E. i Mittermeier, R.A. (red.), Handbook of the Mammals of the World. Tom 2. Hoofed Mammals. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-77-4.

Camelidae

Lama guanicoe

Wilson, D. E. i Reeder, D. M. (1993): Mammal Species of the World: a Taxonomic and Geographic Reference. Wydanie drugie, xviii + 1207 s., Waszyngton (Smithsonian Institution Press).

CARNIVORA

Felidae

Felidae spp.,

Kitchener A. C., Breitenmoser-Würsten CH., Eizirik E., Gentry A., Werdelin L., Wilting A., Yamaguchi N., Abramov A. V., Christiansen P., Driscoll C., Duckworth J. W., Johnson W., Luo S.-J., Meijaard E., O’Donoghue P., Sanderson J., Seymour K., Bruford M., Groves C., Hoffmann M., Nowell K., Timmons Z. i Tobe S. (2017). A revised taxonomy of the Felidae. The final report of the Cat Classification Task Force of the IUCN/SSC Cat Specialist Group. Cat News wydanie specjalne 11, 80 s.

Mustelidae: Lutrinae

Aonyx cinereus

Larivière, S. i Jennings, A.P. 2009. Species account 37 for Asian Small-clawed Otter Aonyx cinereus, s. 647 w Wilson, D.E. i Mittermeier, R.A. (red.), Handbook of the Mammals of the World. Tom 1. Carnivores. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-49-1.

CETACEA

Balaenopteridae

Balaenoptera omurai

Wada, S., Oishi, M. i Yamada, T. K. (2003). A newly discovered species of living baleen whales. – Nature, 426: 278–281.

Delphinidae

Orcaella heinsohni

Beasly, I., Robertson, K. M. i Arnold, P. W. (2005). Description of a new dolphin, the Australian Snubfin Dolphin, Orcaella heinsohni sp. n. (Cetacea, Delphinidae). -- Marine Mammal Science, 21 (3): 365–400.

Delphinidae

Sotalia fluviatilis

Sotalia guianensis

Caballero, S., Trujillo, F., Vianna, J. A., Barrios-Garrido, H., Montiel, M. G., Beltrán-Pedreros, S., Marmontel, M., Santos, M. C., Rossi-Santos, M. R. i Baker, C. S. (2007). Taxonomic status of the genus Sotalia: species level ranking for „tucuxi” (Sotalia fluviatilis) and „costero” (Sotalia guianensis) dolphins. - Marine Mammal Science, 23: 358–386.

Delphinidae

Sousa plumbea

Sousa sahulensis

Jefferson, T. A. i Rosenbaum, H. C. (2014): Taxonomic revision of the humpback dolphins (Sousa spp.), and description of a new species from Australia. Marine Mammal Science, 30 (4): 1494–1541.

Delphinidae

Tursiops australis

Charlton-Robb, K., Gershwin, L.-A., Thompson, R., Austin, J., Owen, K. i McKechnie, S. (2011). A new dolphin species, the Burrunan Dolphin Tursiops australis sp. nov., endemic to southern Australian coastal waters. PLoS ONE, 6 (9): e24047.

Iniidae

Inia araguaiaensis

Hrbek, T., da Silva, V. M. F., Dutra, N., Gravena, W., Martin, A. R. i Farias, I. P. (2014): A new species of river dolphin from Brazil or: How little do we know our biodiversity. PLoS ONE 83623: 1–12.

Phocoenidae

Neophocaena asiaeorientalis

Jefferson, T. A. i Wang, J. Y. (2011). Revision of the taxonomy of finless porpoises (genus Neophocaena): The existence of two species. Journal of Marine Animals and their Ecology, 4 (1): 3–16.

Physeteridae

Physeter macrocephalus

Rice, D. W. (1998). Marine Mammals of the World: Systematics and Distribution - Society of Marine Mammalogy Special Publication Number 4, The Society for Marine Mammalogy, Lawrence, Kansas.

Platanistidae

Platanista gangetica

Rice, D. W. (1998). Marine Mammals of the World: Systematics and Distribution - Society of Marine Mammalogy Special Publication Number 4, The Society for Marine Mammalogy, Lawrence, Kansas.

Ziphiidae

Mesoplodon hotaula

Dalebout, M. L., Scott Baker, C., Steel, D., Thompson, K., Robertson, K. M., Chivers, S. J., Perrin, W. F., Goonatilake, M., Anderson, C. R., Mead, J. G., Potter, C. W., Thompson, L., Jupiter, D. i Yamada, T. K. (2014). Resurrection of Mesoplodon hotaula Deraniyagala 1963: A new species of beaked whale in the tropical Indo-Pacific. Marine Mammal Science, 30 (3): 1081–1108.

PRIMATES

Aotidae

Aotus jorgehernandezi

Defler, T. R. i Bueno, M. L. (2007). Aotus diversity and the species problem. – Primate Conservation, 22: 55–70.

Aotidae

Aotus lemurinus (w tym A. hershkovitzi)

Mittermeier, R.A., Rylands, A.B. i Wilson, D.E. 2013. Handbook of the Mammals of the World: Volume 3. Primates. Lynx Edicions, Barcelona.

Atelidae

Alouatta    palliata    (w tym A. coibensis)

Ruiz-García, M., Cerrón, Á., Sánchez-Castillo, S., Rueda-Zozaya, P., Pinedo-Castro, M., Gutierrez-Espeleta, G. i Shostell, J.M. (2017): Phylogeography of the Mantled Howler Monkey (Alouatta palliata; Atelidae, Primates) across its geographical range by means of mitochondrial genetic analyses and new insights about the phylogeny of Alouatta. Folia Primatologica 88: 421–454.

Atelidae

Ateles geoffroyi

Rylands, A. B., Groves, C. P., Mittermeier, R. A., Cortes-Ortiz, L. i Hines, J. J. (2006). Taxonomy and distributions of Mesoamerican primates. [W:] A. Estrada, P. Garber, M. Pavelka i L. Luecke (red.), New Perspectives in the Study of Mesoamerican Primates: Distribution, Ecology, Behavior and Conservation, s. 29–79. Springer, Nowy Jork, USA.

Cebidae

Callithrix manicorensis

Garbino, T. i Siniciato, G. (2014). The taxonomic status of Mico marcai (Alperin 1993) and Mico manicorensis (van Roosmalen i in. 2000) (Cebidae, Callitrichinae) from Southwestern Brazilian Amazonia. International Journal of Primatology, 35 (2): 529–546. [Dla Mico marcai w połączeniu z Mico manicorensis traktowanych jak Callithrix manicorensis w ramach CITES]

Cebidae

Cebus flavius

Oliveira, M. M. de i Langguth, A. (2006). Rediscovery of Marcgrave’s Capuchin Monkey and designation of a neotype for Simia flava Schreber, 1774 (Primates, Cebidae). – Boletim do Museu Nacional do Rio de Janeiro, N.S., Zoologia, 523: 1–16.

Cebidae

Mico rondoni

Ferrari, S. F., Sena, L., Schneider, M. P. C. i Júnior, J. S. S. (2010). Rondon’s Marmoset, Mico rondoni sp. n., from southwestern Brazilian Amazonia. International Journal of Primatology, 31: 693–714.

Cebidae

Saguinus ursulus

Gregorin, R. i de Vivo, M. (2013). Revalidation of Saguinus ursula Hoffmannsegg (Primates: Cebidae: Callitrichinae). Zootaxa, 3721 (2): 172–182.

Cebidae

Saimiri collinsi

Merces, M. P., Alfaro, J. W. L., Ferreira, W. A. S., Harada, M. L. i Júnior, J. S. S. (2015). Morphology and mitochondrial phylogenetics reveal that the Amazon River separates two eastern squirrel monkey species: Saimiri sciureus and S. collinsi. Molecular Phylogenetics and Evolution, 82: 426–435.

Cercopithecidae

Allochrocebus lhoesti

Allochrocebus preussi

Allochrocebus solatus

Mittermeier, R.A., Rylands, A.B., Wilson, D.E. 2013. Handbook of the Mammals of the World: Volume 3. Primates. Lynx Edicions, Barcelona.

Cercopithecidae

Cercopithecus lomamiensis

Hart, J.A., Detwiler, K.M., Gilbert, C.C., Burrell, A.S., Fuller, J.L., Emetshu, M., Hart, T.B., Vosper, A., Sargis, E.J. i Tosi, A.J. (2012): Lesula: A new species of Cercopithecus monkey endemic to the Democratic Republic of Congo and implications for conservation of Congo’s Central Basin. PLoS ONE, 7 (9): e44271.

Cercopithecidae

Macaca leucogenys

Li, C., Zhao, C. i Fan, P.F. (2015). White-cheeked macaque (Macaca leucogenys): A new macaque species from Modog, southeastern Tibet. American Journal of Primatology, 77:753-766.

Cercopithecidae

Macaca munzala

Sinha, A., Datta, A., Madhusudan, M. D. i Mishra, C. (2005). Macaca munzala: A new species from western Arunachal Pradesh, northeastern India. International Journal of Primatology, 26 (4): 977–989. doi:10.1007/s10764-005-5333-3.

Cercopithecidae

Piliocolobus bouvieri

Piliocolobus epieni

Piliocolobus temminckii

Piliocolobus waldronae

Mittermeier, R.A., Rylands, A.B. i Wilson, D.E. 2013. Handbook of the Mammals of the World: Volume 3. Primates. Lynx Edicions, Barcelona.

Cercopithecidae

Rhinopithecus strykeri

Geismann, T., Lwin, N., Aung, S. S., Aung, T. N., Aung, Z. M., Hla, T. H., Grindley, M. i Momberg, F. (2011). A new species of snub-nosed monkey, genus Rhinopithecus Milne-Edwards, 1872 (Primates, Colobinae), from Northern Kachin State, Northeastern Myanmar. – American Journal of Primatology, 73: 96–107.

Cercopithecidae

Rungwecebus kipunji

Davenport, T. R. B., Stanley, W. T., Sargis, E. J., de Luca, D. W., Mpunga, N. E., Machaga, S. J. i Olson, L. E. (2006). A new genus of African monkey, Rungwecebus: Morphology, ecology, and molecular phylogenetics. Science, 312: 1378–1381.

Cercopithecidae

Trachypithecus villosus

Brandon- Jones, D., Eudey, A. A., Geissmann, T., Groves, C. P., Melnick, D. J., Morales J. C., Shekelle, M. i Steward, C.-B. (2004). Asian primate classification. International Journal of Primatology, 25: 97–163.

Cercopithecidae

Cheirogaleus andysabini

Lei, R., McLain, A.T., Frasier, C.L., Taylor, J.M., Bailey, C.A., Enberg, S.E., Ginter, A.L., Nash, S.D., Randriamampionona, R., Groves, C.P., Mittermeier, R.A. i Louis, Jr., E.E. (2015): A new species in the genus Cheirogaleus (Cheirogaleidae). Primate Conservation 29 (2): 1–12.

Cercopithecidae

Cheirogaleus lavasoensis

Thiele, D., Razafimahatratra, E. i Hapke, A. (2013). Discrepant partitioning of genetic diversity in mouse lemurs and dwarf lemurs – biological reality or taxonomic bias? Molecular Phylogenetics and Evolution, 69: 593–609.

Cercopithecidae

Cheirogaleus chethi

Frasier, C.L., Lei, R., McLain, A.T., Taylor, J.M., Bailey, C.A., Ginter, A.L., Nash, S.D., Randriamampionona, R., Groves, C.P., Mittermeier, R.A. i Louis, Jr., E.E. (2016). A New Species ofDwarf Lemur (Cheirogaleidae: Cheirogaleus medius Group) from the Ankarana and Andrafiamena- Andavakoera Massifs, Madagascar. Primate Conservation (30): 59–72.

Cheirogaleidae

Microcebus ganzhorni

Microcebus manitatra

Hotaling, S., Foley, M.E., Lawrence, N.M., Bocanegra, J., Blanco, M.B., Rasoloarison, R. Kappeler, P.M., Barrett, M.A., Yoder, A.D. i Weisrock, D.W. (2016). „Species discovery and validation in a cryptic radiation of endangered primates: coalescent-based species delimitation in Madagascar’s mouse lemurs”. Molecular Ecology. 25 (9): 2029–2045. doi:10.1111/mec.13604

Cercopithecidae

Microcebus gerpi

Radespiel, U., Ratsimbazafy, J. H., Rasoloharijaona, S., Raveloson, H., Andriaholinirina, N., Rakotondravony, R., Randrianarison, R. M. i Randrianambinina, B. (2012). First indications of a highland specialist among mouse lemurs (Microcebus spp.) and evidence for a new mouse lemur species from eastern Madagascar. Primates, 53: 157–170.

Cercopithecidae

Microcebus marohita

Microcebus tanosi

Rasoloarison, R. M., Weisrock, D. W., Yoder, A. D., Rakotondravony, D. i Kappeler, P. M. [2013]. Two new species of mouse lemurs (Cheirogaleidae: Microcebus) from Eastern Madagascar. - International Journal of Primatology, 34: 455–469.

Galagidae

Paragalago cocos

Paragalago granti

Paragalago orinus

Paragalago rondoensis

Paragalago zanzibaricus

Masters, J.C., Génin, F., Couette, S., Groves, C.P., Nash, S.D., Delpero, M. i Pozzi, L. (2017). A new genus for the eastern dwarf galagos (Primates: Galagidae). - Zoological Journal of the Linnean Society 181 (1): 229–241. https://doi.org/10.1093/zoolinnean/zlw028

Galagidae

Galagoides kumbirensis

Svensson, M.S., Bersacola,, E., Mills, M.S.L., Munds, R.A., Nijman, V., Perkin, A., Masters, J.C., Couette, S., Nekaris, K.A. i Bearder, S.K. (2017): A giant among dwarfs: a new species of galago (Primates: S., Galagidae) from Angola. Am. J. Phys. Anthropol. 163 (1): 30–43. doi: 10.1002/ajpa.23175

Hominidae

Pongo tapanuliensis

Nater, A. Greminger, M.P., Nurcahyo, A., Nowak, M.G., De Manuel Montero, M., Desai, T., Groves, C.P., Pybus, M., Sonay, T.B., Roos, C., Lameira, A.R., Wich, S.A., Askew, J., Davila-Ross, M., Fredriksson, G.M., De Valles, G., Casals, F., Prado-Martinez, J., Goossens, B., Verschoor, E.J., Warren, K.S., Singleton, I., Marques, D.A., Pamungkas, J., Perwitasari-Farajallah, D., Rianti, P., Tuuga, A., Gut, I.G., Gut, M., Orozco-Ter Wengel, P., Van Schaik, C.P., Bertranpetit, J., Anisimova, M., Scally, A., Marques-Bonet, T., Meijaard, E. i Krutzen, M. (2017): Morphometric, behavioural, and genomic evidence for a new orangutan species. Current Biology 27: DOI: 10.1016/j.cub.2017.09.047

Hylobatidae

Hylobates abbotti

Hylobates funereus

Mittermeier, R.A., Rylands, A.B. i Wilson, D.E. 2013. Handbook of the Mammals of the World: Volume 3. Primates. Lynx Edicions, Barcelona.

Hylobatidae

Nomascus annamensis

Van Ngoc Thinh, Mootnick, A. R., Vu Ngoc Thanh, Nadler, T. i Roos, C. (2010). A new species of crested gibbon from the central Annamite mountain range. Vietnamese Journal of Primatology, 4: 1–12.

Indriidae

Propithecus candidus

Propithecus coronatus

Mittermeier, R.A., Rylands, A.B. i Wilson, D.E. 2013. Handbook of the Mammals of the World: Volume 3. Primates. Lynx Edicions, Barcelona.

Lemuriidae

Eulemur flavifrons

Mittermeier, R.A., Rylands, A.B. i Wilson, D.E. 2013. Handbook of the Mammals of the World: Volume 3. Primates. Lynx Edicions, Barcelona.

Lorisidae

Nycticebus javanicus

Mittermeier, R.A., Rylands, A.B. i Wilson, D.E. 2013. Handbook of the Mammals of the World: Volume 3. Primates. Lynx Edicions, Barcelona.

Lorisidae

Nycticebus kayan

Munds, R.A., Nekaris, K.A.I. i Ford, S.M. (2013): Taxonomy of the bornean slow loris, with new species Nycticebus kayan (Primates, Lorisidae). American Journal of Primatology, 75: 46–56.

Pitheciidae

Cacajao melanocephalus

Cacajao oukary

Ferrari, S. F., Guedes, P. G., Figueiredo-Ready, W. M. B. i Barnett, A. A. (2014). Reconsidering the taxonomy of the Black-faced Uacaris, Cacajao melanocephalus group (Mammalia: Pitheciidae), from the northern Amazon Basin. Zootaxa, 3866 (3): 353–370.

Pitheciidae

Cheracebus spp.

Plecturocebus spp.

Byrne, H, Rylands, A.B., Cameiro, J.C., Alfaro, J.W.L., Bertuol, F., Da Silva, M.N.F., Messias, M., Groves, C.P., Mittermeier, R.A., Farias, I., Hrbek, T., Schneider, H., Sampaio, I. i Boubli, J.P. (2016). Phylogenetic relationships of the New World titi monkeys (Callicebus): first appraisal of taxonomy based on molecular evidence. Frontiers in Zoology 13 (10): 1–25. https://doi.org/10.1186/s12983-016-0142-4

Pitheciidae

Pithecia cazuzai

Pithecia chrysocephala

Pithecia hirsuta

Pithecia inusta

Pithecia isabela

Pithecia milleri

Pithecia mittermeieri

Pithecia napensis

Pithecia pissinattii

Pithecia rylandsi 

Pithecia vanzolinii

Marsh, L.K. (2014). A taxonomic revision of the saki monkeys, Pithecia Desmarest, 1804. Neotropical Primates, 21: 1–163.

Pitheciidae

Plecturocebus grovesi

Boubli, J.P., Byrne, H., Da Silva, M.N.F., Silva-Junior, J., Araujo, R.C., Bertuol, F., Goncalves, J., De Melo, F.R., Rylands, A.B., Mittermeier, R.A., Silva, F.E., Nash, S.D., Canale, G., Alencar, R De M., Rossi, R.V., Carneiro, J., Sampaio, I., Farias, I.P., Schneider, H. i Hrbek, T. (2018). On a new species of titi monkey (Primates: Plecturocebus Byrne i in., 2016), from Alta Floresta, southern Amazon, Brazil. Molecular Phylogenetics and Evolution 132: 117–137.

Tarsiidae

Tarsius lariang

Merker, S. i Groves, C.P. (2006): Tarsius lariang: A new primate species from Western Central Sulawesi. International Journal of Primatology, 27 (2): 465–485.

Tarsiidae

Tarsius spectrumgurskyae

Tarsius supriatnai

Shekelle, M., Groves, C.P., Maryanto, I. i Mittermeier, R.A. (2017). Two new tarsier species (Tarsiidae, Primates) and the biogeography of Sulawesi, Indonesia. Primate Conservation 31: 61–70.

Tarsiidae

Tarsius tumpara

Shekelle, M., Groves, C., Merker, S. i Supriatna, J. (2010). Tarsius tumpara: A new tarsier species from Siau Island, North Sulawesi. Primate Conservation, 23: 55–64.

PROBOSCIDEA

Elephantidae

Loxodonta africana

Wilson, D. E. i Reeder, D. M. (1993). Mammal Species of the World: a Taxonomic and Geographic Reference. Wydanie drugie, xviii + 1207 s., Waszyngton (Smithsonian Institution Press).

SCANDENTIA

Tupaiidae

Tupaia everetti

Roberts, T. E., Lanier, H. C., Sargis, E. J. i Olson, L. E. (2011). Molecular phylogeny of treeshrews (Mammalia: Scandentia) and the timescale of diversification in Southeast Asia. Molecular Phylogenetics and Evolution, 60 (3): 358–372.

Tupaiidae

Tupaia palawanensis

Sargis, E. J., Campbell, K. K. i Olson, L. E. (2014). Taxonomic boundaries and craniometric variation in the treeshrews (Scandentia, Tupaiidae) from the Palawan faunal region. Journal of Mammalian Evolution, 21 (1): 111–123.

AVES

Nazwy rzędów i rodzin ptaków

Morony, J. J., Bock, W. J. i Farrand, J., Jr. (1975). Reference List of the Birds of the World. American Museum of Natural History. 207 s.

Wszystkie gatunki ptaków – z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Dickinson, E.C. (red.) (2003). The Howard and Moore Complete Checklist of the Birds of the World. Wydanie trzecie uzupełnione i poprawione. 1039 s., Londyn (Christopher Helm).

w połączeniu z

Dickinson, E.C. (2005): Corrigenda 4 (02.06.2005) to Howard i Moore, wyd. 3 (2003).

APODIFORMES

Trochilidae

Amazilia hoffmanni

Amazilia saucerottei

Jiménez, R.A. i Ornelas, J.F. (2016). Historical and current introgression in a Mesoamerican hummingbird species complex: a biogeographic perspective. PeerJ. 2016; 4: e1556. doi:10.7717/peerj.1556.

Trochilidae

Anthracothorax nigricollis iridescens

Phaethornis longirostris

Phaethornis mexicanus

Selasphorus calliope

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

Trochilidae

Hylocharis leucotis

Hylocharis xantusii

Campylopterus curvipennis

Campylopterus excellens

Phaeochroa cuvierii

Dickinson, E.C. i Remsen, J.V. (red.) (2013). The Howard and Moore Complete Checklist of the Birds of the World. Wydanie czwarte, tom. 1: Non-Passerines. Aves Press, Eastbourne, UK. ISBN 978-0-9568611-0- 8.

Trochilidae

Chlorostilbon lucidus

Pacheco, J. F. i Whitney, B. M. (2006). Mandatory changes to the scientific names of three Neotropical birds Bull. Brit. Orn. Club, 126: 242–244.

Trochilidae

Eriocnemis isabellae

Cortés-Diago, A., Ortega, L. A., Mazariegos-Hurtado, L. i Weller, A.-A. (2007) A new species of Eriocnemis (Trochilidae) from southwest Colombia. Ornitologia Neotropical, 18:161-170.

Trochilidae

Oreotrochilus cyanolaemus

Sornoza-Molina, F., Freile, J.F., Nilsson, J., Krabbe, N. i Bonaccorso, E. (2018). A striking, critically endangered, new species of hillstar (Trochilidae: Oreotrochilus) from the southwestern Andes of Ecuador. The Auk: Ornithological Advances, 135(4), 1146-1171. https://doi.org/10.1642/AUK-18-58.1

Trochilidae

Phaethornis aethopyga

Piacentini, V. Q., Aleixo, A. i Silveira, L. F. (2009). Hybrid, subspecies or species? The validity and taxonomic status of Phaethornis longuemareus aethopyga Zimmer, 1950 (Trochilidae). Auk,126: 604–612.

CICONIIFORMES

Phoenicopteridae

Phoenicopterus roseus

Phoenicopterus ruber

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

FALCONIFORMES

Accipitridae

Accipiter hiogaster

Accipiter novaehollandiae

Buteo nitidus

Buteo plagiatus

Buteogallus anthracinus

Buteogallus gundlachii

Buteogallus solitarius

Chondrohierax uncinatus

Chondrohierax wilsonii

Circus cyaneus

Circus hudsonius

Leptodon cayanensis

Leptodon forbesi

Pseudastur albicollis

Rupornis magnirostris

Spizaetus melanoleucus

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

Accipitridae

Aquila hastata

Parry, S. J., Clark, W. S. i Prakash, V. (2002). On the taxonomic status of the Indian Spotted Eagle Aquila hastata. Ibis, 144: 665–675.

Accipitridae

Buteo socotraensis

Porter, R. F. i Kirwan, G. M. (2010). Studies of Socotran birds VI. The taxonomic status of the Socotra Buzzard. Bulletin of the British Ornithologists’ Club, 130 (2): 116–131.

Accipitridae

Geranoaetus albicaudatus

Dickinson, E.C. i Remsen, J.V. (red.) (2013). The Howard and Moore complete checklist of the birds of the world. Wydanie czwarte, tom. 1: Non-Passerines. Aves Press, Eastbourne, UK. ISBN 978-0-9568611-0- 8.

Falconidae

Falco peregrinus (w tym Falco pelegrinoides)

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

Falconidae

Micrastur mintoni

Whittaker, A. (2002). A new species of forest-falcon (Falconidae: Micrastur) from southeastern Amazonia and the Atlantic rainforests of Brazil. Wilson Bulletin, 114: 421–445.

GRUIFORMES

Gruidae

Antigone antigone

Antigone canadensis

Antigone rubicunda

Antigone vipio

Leucogeranus leucogeranus

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

Rallidae

Hypotaenidia sylvestris

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

PASSERIFORMES

Muscicapidae

Garrulax taewanus

Collar, N. J. (2006). A partial revision of the Asian babblers (Timaliidae). Forktail, 22: 85–112.

Paradisaeidae

Lophorina niedda

Lophorina minor

Lophorina superba

Scholes, E. i Laman, T.G. (2018). Distinctive courtship phenotype of the Vogelkop Superb Bird-of-Paradise Lophorina niedda Mayr, 1930 confirms new species status. PeerJ 6:e4621 https://doi.org/10.7717/peerj.4621.  

PSITTACIFORMES

Cacatuidae

Cacatua goffiniana

Roselaar, C. S. i Michels, J. P. (2004). Nomenclatural chaos untangled, resulting in the naming of the formally undescribed Cacatua species from the Tanimbar Islands, Indonesia (Psittaciformes: Cacatuidae). Zoologische Verhandelingen, 350: 183–196.

Cacatuidae

Zanda baudinii

Zanda latirostris

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

Loriidae

Trichoglossus haematodus

Collar, N. J. (1997). Family Psittacidae (Parrots). In del Hoyo, J., Elliot, A. and Sargatal, J. (eds.), Handbook of the Birds of the World, 4 (Sandgrouse to Cuckoos): 280–477. Barcelona (Lynx Edicions).

Psittacidae

Aratinga maculata

Nemesio, A. i Rasmussen, C. (2009). The rediscovery of Buffon's »Guarouba« or »Perriche jaune«: two senior synonyms of Aratinga pintoi Silveira, Lima i Höfling, 2005 (Aves: Psittaciformes). Zootaxa, 2013: 1–16.

Psittacidae

Eupsittula canicularis

Eupsittula nana

Myiopsitta luchsi

Myiopsitta monachus

Psephotellus chrysopterygius

Psephotellus dissimilis

Psephotellus pulcherrimus

Psephotellus varius

Psittacara holochlorus

Pyrilia haematotis

Del Hoyo, J. & Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

Psittacidae

Forpus modestus

Pacheco, J. F. i Whitney, B. M. (2006). Mandatory changes to the scientific names of three Neotropical birds. Bulletin of the British Ornithologists’ Club, 126: 242–244.

Psittacidae

Pionopsitta aurantiocephala

Gaban-Lima, R., Raposo, M. A. & Hofling, E. (2002). Description of a new species of Pionopsitta (Aves: Psittacidae) endemic to Brazil. Auk, 119: 815–819.

Psittacidae

Poicephalus robustus

Poicephalus fuscicollis

Coetzer, W.G., Downs, C.T., Perrin, M.R. & Willows-Munro, S. (2015). Molecular Systematics of the Cape Parrot (Poicephalus robustus). Implications for Taxonomy and Conservation. PLoS ONE, 10(8): e0133376. doi: 10.1371/journal.pone.0133376.

Psittacidae

Psittacara strenuus

Pezoporus flaviventris

Pezoporus wallicus

Dickinson, E.C. i Remsen, J.V. (red.) (2013). The Howard and Moore complete checklist of the birds of the world. Wydanie czwarte, tom. 1: Non-Passerines. Aves Press, Eastbourne, UK. ISBN 978-0-9568611-0- 8.

Psittacidae

Psittacula intermedia

Collar, N. J. (1997) Family Psittacidae (Parrots). W: del Hoyo, J., Elliot, A. i Sargatal, J. (red.), Handbook of the Birds of the World, 4 (Sandgrouse to Cuckoos): 280–477. Barcelona (Lynx Edicions).

Psittacidae

Pyrrhura griseipectus

Olmos, F., Silva, W. A. G. i Albano, C. (2005). Grey-breasted Conure Pyrrhura griseipectus, an overlooked endangered species. Cotinga, 24: 77–83.

Psittacidae

Pyrrhura parvifrons

Arndt, T. (2008). Anmerkungen zu einigen Pyrrhura-Formen mit der Beschreibung einer neuen Art und zweier neuer Unterarten. Papageien, 8: 278–286.

STRIGIFORMES

Strigidae

Ciccaba virgata

Megascops asio

Megascops barbarus

Megascops guatemalae

Megascops kennicottii

Megascops seductus

Megascops trichopsis

Psiloscops flammeolus

Del Hoyo, J. i Collar, N.J. (2014). HBW and Birdlife International Illustrated Checklist of the Birds of the World. Volume 1: Non-Passerines. Lynx Edicions, Barcelona. ISBN 978-84-96553-94-1.

Strigidae

Glaucidium mooreorum

da Silva, J. M. C., Coelho, G. i Gonzaga, P. (2002). Discovered on the brink of extinction: a new species of pygmy owl (Strigidae: Glaucidium) from Atlantic forest of northeastern Brazil. Ararajuba, 10(2): 123–130.

Strigidae

Megascops gilesi

Krabbe, N.K. (2017). A new species of Megascops (Strigidae) from the Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia, with notes on voices of New World screech-owls. Ornitología Colombiana 16: 1–27.

Strigidae

Ninox burhani

Indrawan, M. i Somadikarta, S. (2004). A new hawk-owl from the Togian Islands, Gulf of Tomini, central Sulawesi, Indonesia. Bulletin of the British Ornithologists' Club, 124: 160–171.

Strigidae

Otus thilohoffmanni

Warakagoda, D. H. i Rasmussen, P. C. (2004). A new species of scops-owl from Sri Lanka. Bulletin of the British Ornithologists' Club, 124 (2): 85–105.

Strigidae

Strix butleri

Strix hadorami

Kirwan, G.M., Schweizer, M. i Copete, J.L. (2015). Multiple lines of evidence confirm that Hume's Owl Strix butleri (A. O. Hume, 1878) is two species, with description of an unnamed species (Aves: Non- Passeriformes: Strigidae). Zootaxa. 3904 (1): 28–50.

REPTILIA

CROCODYLIA i

RHYNCHOCEPHALIA

Crocodylia i Rhynchocephalia z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Wermuth, H. i Mertens, R. (1996) (reprint). Schildkröte, Krokodile, Brückenechsen. xvii + 506 s. Jena (Gustav Fischer Verlag).

Crocodylidae

Crocodylus johnstoni

Tucker, A. D. (2010). The correct name to be applied to the Australian freshwater crocodile, Crocodylus johnstoni [Krefft, 1873]. Australian Zoologist, 35 (2): 432–434.

Sphenodontidae

Sphenodon spp.

Hay, J. M., Sarre, S. D., Lambert, D. M., Allendorf, F. W. i Daugherty, C. H. (2010). Genetic diversity and taxonomy: a reassessment of species designation in tuatara (Sphenodon: Reptilia). Conservation Genetics, 11 (93): 1063–1081.

SAURIA

Dla oznaczenia rodzin w ramach Sauria

Pough, F. H., Andrews, R. M., Cadle, J. E., Crump, M. L., Savitzky, A. H. i Wells, K. D. (1998). Herpetology. Upper Saddle River/New Jersey (Prentice Hall).

Agamidae

Ceratophora spp.

Cophotis spp.

Lyriocephalus spp.

Uetz, P., Freed, P., Aguilar, R. i Hosek, J. (red.) (red.) (2022). Taxonomic Checklist of Reptile taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties (Genewa, sierpień 2019 r.). Informacje o gatunkach pochodzące z bazy danych Reptile: źródło internetowe, wersja z dnia 2 maja 2020 r., dostęp z dnia 5 maja 2020 r. w odniesieniu do gatunków z rodzin Agamidae, Gekkonidae i Viperidae. https://cites.org/sites/default/files/eng/resources/checklists/Checklist_Reptiles_Added_CoP18lr_CITES. pdf

Agamidae

Saara spp.

Uromastyx spp.

Wilms, T. M., Böhme, W., Wagner, P., Lutzmann, N. i Schmitz, A. (2009). On the phylogeny and taxonomy of the genus Uromastyx Merrem, 1820 (Reptilia: Squamata: Agamidae: Uromastycinae) – resurrection of the genus Saara Gray, 1845. Bonner zool. Beiträge, 56 (1-2): 55–99.

Anguidae

Abronia spp.

UETZ, P., FREED, P. i HŎSEK, J. (red.) (2016): Taxonomic checklist of the species of the genus Abronia. Informacje o gatunku pochodzące z „The Reptile Database”, wersja z dnia 15 sierpnia 2016 r., dostęp z dnia 11 maja 2017 r. Zob. załącznik 2 do AC29 Doc.35. na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/29/E-AC29-35-A2.pdf

Anguidae

Abronia morenica

Clause, A.G., Luna-Reyes, R. i Nieto-Montes de Oca, A. (2020): A New Species of Abronia (Squamata: Anguidae) from a Protected Area in Chiapas, Mexico. Herpetologica 76(3): 330–343. https://doi.org/10.1655/Herpetologica-D-19-00047

Chamaeleonidae

Chamaleonidae spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Glaw, F. (2015). Taxonomic checklist of chamaeleons (Squamata: Chamaeleonidae). Vertebrate Zoology, 65 (2): 167–246.

(http://www.senckenberg.de/files/content/forschung/publikationen/vertebratezoology/vz65-   2/01_vertebrate_zoology_65-2_glaw_167-246.pdf )

Chamaeleonidae

Brookesia antakarana (w tym B. ambreensis)

SCHERZ, M. D., GLAW, F., RAKOTOARISON, A., WAGLER, M. i VENCES, M. (2018): Polymorphism and synonymy of Brookesia antakarana and B. ambreensis, leaf chameleons from Montagne d’Ambre in north Madagascar. Salamandra 54 (4): 259–268

Chamaeleonidae

Calumma gehringi

PRÖTZEL, D., VENCES, M., SCHERZ, M. D., VIEITES, D. R. i GLAW, F. (2017): Splitting and lumping: An integrative taxonomic assessment of Malagasy chameleons in the Calumma guibei complex results in the new species C. gehringi sp. nov. - Vertebrate Zoology 67 (2): 231–249.

Chamaeleonidae

Calumma juliae

Calumma lefona

Calumma uetzi

PRÖTZEL, D., HAWLITSCHEK, O., SCHERZ, M. D., RATSOAVINA. F. M. i GLAW, F. (2018): Endangered beauties: micro-CT cranial osteology, molecular genetics and external morphology reveal three new species of chameleons in the Calumma boettgeri complex (Squamata: Chamaeleonidae). Zoological Journal of the Linnean Society zlx112, DOI: 10.1093/zoolinnean/zlx112

Chamaeleonidae

Calumma roaloko

PRÖTZEL, D., LAMBERT, S. M., ANDRIANOSOLO, G. T., HUTTER, C. R., COBB, K. A., SCHERZ, M. D. i GLAW, F. (2018): The smallest ‘true chameleon’ from Madagascar: a new, distinctly colored species of the Calumma boettgeri complex (Squamata, Chamaeleonidae). - Zoosystematics and Evolution 94 (2): 409–423

Chamaeleonidae

Kinyongia itombwensis

Kinyongia rugegensis

Kinyongia tolleyae

HUGHES, D. F., KUSAMBA, C., BEHANGANA, M. i GREENBAUM, E. (2017): Integrative taxonomy of the Central African forest chameleon, Kinyongia adolfifriderici (Sauria: Chamaeleonidae), reveals underestimated species diversity in the Albertine Rift. - Zoological Journal of the Linnean Society 181 (2): 400–438.

Chamaeleonidae

Kinyongia msuyae

MENEGON, M., LOADER, S. P., DAVENPORT, T. R. B., HOWELL, K. M, TILBURY, C. R., MACHAGA, S. i TOLLEY, K.A. (2015): A new species of chameleon (Sauria: Chamaeleonidae Kinyongia) highlights the biological affinities between the Southern Highlands and Eastern Arc Mountains of Tanzania. - Acta Herpetologica 10 (2): 111–120.

Cordylidae

Cordylidae spp. z wyjątkiem taksonu wymienionego poniżej

Stanley, E. L., Bauer, A. M., Jackman, T. R., Branch, W. R. i P. le F. N. (2011). Between a rock and a hard polytomy: rapid radiation in the rupicolous girdled lizards (Squamata: Cordylidae). Molecular Phylogenetics and Evolution, 58 (1): 53–70.

Cordylidae

Cordylus marunguensis

Greenbaum, E., Stanley, E. L., Kusamba, C., Moninga, W. M., Goldberg, S. R. i Cha (2012). A new species of Cordylus (Squamata: Cordylidae) from the Marungu Plateau of south-eastern Democratic Republic of the Congo. African Journal of Herpetology, 61 (1): 14–39.

Cordylidae

Cordylus namakuiyus

STANLEY, E. L., CERÍACO, L. M. P., BANDEIRA, S., VALERIO, H., BATES, M. F. i BRANCH, W. R. (2016): A review of Cordylus machadoi (Squamata: Cordylidae) in southwestern Angola, with the description of a new species from the Pro-Namib desert. - Zootaxa 4061 (3): 201–226.

Eublepharidae

Goniurosaurus spp.

UETZ, P., FREED, P., AGUILAR, R. i HÖSEK, J. (red.) (2022): Taxonomic Checklist of Reptile taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties (Genewa, sierpień 2019 r.). Informacje o gatunkach pochodzące z bazy danych Reptile: źródło internetowe, wersja z dnia 20 marca 2022 r., dostęp    z dnia 5 maja 2022 r. dla gatunków z rodziny Eublepharidae. https://cites.org/sites/default/files/eng/resources/checklists/Checklist_Reptiles_Added_CoP18lr_CITES. pdf

Gekkonidae

Cnemaspis psychedelica

Grismer, L. L., Ngo, V. T. i Grismer, J. L. (2010). A colorful new species of insular rock gecko (Cnemaspis Strauch 1887) from southern Vietnam. Zootaxa, 58: 46–58.

Gekkonidae

Dactylonemis spp.

Hoplodactylus spp.

Mokopirirakau spp.

Nielsen, S. V., Bauer, A. M., Jackman, T. R., Hitchmough, R. A. i Daugherty, C. H. (2011). New Zealand geckos (Diplodactylidae): Cryptic diversity in a post-Gondwanan lineage with trans-Tasman affinities. Molecular Phylogenetics and Evolution, 59 (1): 1–22.

Gekkonidae

Gekko gecko (w tym Gekko reevesii)

UETZ, P., FREED, P., AGUILAR, R. i HÖSEK, J. (red.) (2022): Taxonomic Checklist of Reptile taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties (Genewa, sierpień 2019 r.). Informacje o gatunkach pochodzące z bazy danych Reptile: źródło internetowe, wersja z dnia 2 maja 2020 r., dostęp z dnia 5 maja 2020 r. w odniesieniu do gatunków z rodzin Agamidae, Gekkonidae i Viperidae. https://cites.org/sites/default/files/eng/resources/checklists/Checklist_Reptiles_Added_CoP18lr_CITES. pdf

Gekkonidae

Gonatodes daudini

POWELL, R. i R.W. HENDERSON. 2005. A new species of Gonatodes (Squamata: Gekkonidae) from the West Indies. Carib. J. Sci. 41 (4): 709–715

Gekkonidae

Lygodactylus williamsi

Informacje o gatunku pochodzące z UETZ, P., FREED, P. i HŎSEK, J. (red.) (2016): The Reptile Database, wersja z dnia 15 sierpnia 2016 r., dostęp z dnia 11 maja 2017 r. Zob. załącznik 2 do AC29 Doc.35. na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/29/E-AC29-35-A2.pdf  

Gekkonidae

Nactus serpensinsula

Kluge, A.G. (1983): Cladistic relationships among gekkonid lizards. Copeia, 2: 465–475.

Gekkonidae

Naultinus spp.

Nielsen, S. V., Bauer, A. M., Jackman, T. R., Hitchmough, R. A. i Daugherty, C. H. (2011). New Zealand geckos (Diplodactylidae): Cryptic diversity in a post-Gondwanan lineage with trans-Tasman affinities. Molecular Phylogenetics and Evolution, 59 (1): 1–22.

Gekkonidae

Paroedura androyensis

UETZ, P., FREED, P., AGUILAR, R. i HÖSEK, J. (red.) (2022): Taxonomic Checklist of Reptile taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties (Genewa, sierpień 2019 r.). Informacje o gatunkach pochodzące z bazy danych Reptile: źródło internetowe, wersja z dnia 2 maja 2020 r., dostęp z dnia 5 maja 2020 r. w odniesieniu do gatunków z rodzin Agamidae, Gekkonidae i Viperidae. https://cites.org/sites/default/files/eng/resources/checklists/Checklist_Reptiles_Added_CoP18lr_CITES. pdf

Gekkonidae

Paroedura masobe

Nussbaum, R.A. i Raxworthy, C.J. (1994): A new rainforest gecko of the genus Paroedura Günther from Madagascar. Herpetological Natural History, 2 (1): 43–49.

Gekkonidae

Phelsuma spp.

Rhoptropella spp.

Glaw, F. i Rösler, H. (2015). Taxonomic checklist of the day geckos of the genera Phelsuma Gray, 1825 and Rhoptropella Hewitt, 1937 (Squamata: Gekkonidae). Vertebrate Zoology, 65 (2): 167–246.

Gekkonidae

Toropuku spp.

Tukutuku spp.

Woodworthia spp.

Nielsen, S. V., Bauer, A. M., Jackman, T. R., Hitchmough, R. A. i Daugherty, C. H. (2011). New Zealand geckos (Diplodactylidae): Cryptic diversity in a post-Gondwanan lineage with trans-Tasman affinities. Molecular Phylogenetics and Evolution, 59 (1): 1–22.

Gekkonidae

Uroplatus spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Raxworthy, C.J. (2003): Introduction to the reptiles. [W:] Goodman, S.M. i Bernstead, J.P. (red.), The natural history of Madagascar: 934–949. Chicago.

Gekkonidae

Uroplatus fiera

RATSOAVINA, F. M., RANJANAHARISOA, F. A., GLAW, F., RASELIMANANA, A. P., MIRALLES, A. i VENCES, M. (2015): A new leaf-tailed gecko of the Uroplatus ebenaui group (Squamata: Gekkonidae) from Madagascar's central eastern rainforests. – Zootaxa 4006 (1): 143–160.

Gekkonidae

Uroplatus fotsivava

Uroplatus kelirambo

RATSOAVINA, F. M., GEHRING, P.-S., SCHERZ, M. D., VIEITES, D. R., GLAW, F. i VENCES, M. (2017): Two new species of leaf-tailed geckos (Uroplatus) from the Tsaratanana mountain massif in northern Madagascar. Zootaxa 4347 (3): 446–464.

Gekkonidae

Uroplatus finiavana

Ratsoavina, F. M., Louis jr., E. E., Crottini, A., Randrianiaina, R.-D., Glaw, F. i Vences, M. (2011). A new leaf tailed gecko species from northern Madagascar with a preliminary assessment of molecular and morphological variability in the Uroplatus ebenaui group. Zootaxa, 3022: 39–57.

Gekkonidae

Uroplatus giganteus

Glaw, F., Kosuch, J., Henkel, W. F., Sound, P. i Böhme, W. (2006). Genetic and morphological variation of the leaf-tailed gecko Uroplatus fimbriatus from Madagascar, with description of a new giant species. Salamandra, 42: 129–144.

Gekkonidae

Uroplatus pietschmanni

Böhle, A. i Schönecker, P. (2003). Eine neue Art der Gattung Uroplatus Duméril, 1805 aus Ost-Madagaskar (Reptilia: Squamata: Gekkonidae). Salamandra, 39 (3/4): 129–138.

Gekkonidae

Uroplatus sameiti

Raxworthy, C. J., Pearson, R. G., Zimkus, B. M., Reddy, S., Deo, A. J., Nussbaum, R. A. i Ingram, C. M. (2008). Continental speciation in the tropics: contrasting biogeographic patterns of divergence in the Uroplatus leaf-tailed gecko radiation of Madagascar. Journal of Zoology, 275: 423–440.

Iguanidae

Iguanidae spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Hollingsworth, B. D. (2004). The Evolution of Iguanas: An Overview of Relationships and a Checklist of Species. [W:] Iguanas: Biology and Conservation (Alberts, A. C., Carter, R. L., Hayes, W. K. i Martins, E. P., red.): 19–44. Berkeley (University of California Press).

Iguanidae

Brachylophus bulabula

Keogh, J. S., Edwards, D. L., Fisher, R. N. i Harlow, P. S. (2008). Molecular and morphological analysis of the critically endangered Fijian iguanas reveals cryptic diversity and a complex biogeographic history. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 363 (1508): 3413–3426.

Iguanidae

Brachylophus gau

FISHER, R. N., NIUKULA, J., WATLING, D. & HARLOW, P. S. (2017): A new species of iguana Brachylophus Cuvier 1829 (Sauria: Iguania: Iguanidae) from Gau Island, Fiji Islands. Zootaxa 4273(3): 407–422.

Iguanidae

Conolophus marthae

Gentile, G. i Snell, H. (2009). Conolophus marthae sp. nov. (Squamata, Iguanidae), a new species of land iguana from the Galápagos archipelago. Zootaxa, 2201: 1–10.

Iguanidae

Ctenosaura spp.

Iguana Taxonomy Working Group (2016). A checklist of the iguanas of the world (Iguanidae; Iguaninae). [W:] Iguanas: Biology, Systematics, and Conservation (J. B. Iverson, T.D. Grant, C .R. Knapp, and S. A. Pasachnik, red.): 4–46. Herpetological Conservation and Biology 11(Monograph 6).

Iguanidae

Cyclura lewisi

Burton, F. J. (2004). Revision to Species Cyclura nubila lewisi, the Grand Cayman Blue Iguana. Caribbean Journal of Science, 40 (2): 198–203.

Iguanidae

Phrynosoma blainvillii

Phrynosoma cerroense

Phrynosoma wigginsi

Montanucci, R.R. (2004): Geographic variation in Phrynosoma coronatum (Lacertilia, Phrynosomatidae): further evidence for a peninsular archipelago. Herpetologica, 60: 117.

Lanthanotidae

Lanthanotidae spp.

UETZ, P., FREED, P. i HŎSEK, J. (red.) (2016): Informacje o rodzinie, rodzaju i gatunku pochodzące z systemu Integrated Taxonomic Information Service (ITIS), źródło internetowe; oraz informacje o gatunku pochodzące z „The Reptile Database”, wersja z dnia 15 sierpnia 2016 r., dostęp z dnia 11 maja 2017 r. Zob. załącznik 2 do AC29 Doc.35. na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/29/E-AC29-35-A2.pdf  

Teiidae

Teiidae spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Harvey, M. B., Ugueto, G. N. i Gutberlet, R. L. Jr. (2012). Review of teiid morphology with a revised taxonomy and phylogeny of the Teiidae (Lepidosauria: Squamata). Zootaxa, 3459: 1–156.

Teiidae

Tupinambis cryptus

Tupinambis cuzcoensis

Tupinambis zuliensis

MURPHY, J.C., JOWERS, M.J., LEHTINEN, R.M., CHARLES, S.P., COLLI, G.R., PERES, A.K. JR, HENDRY, C.R. i PYRON, R.A. (2016): Cryptic, sympatric diversity in tegu lizards of the Tupinambis teguixin group (Squamata, Sauria, Teiidae) and the description of three new species. - PLoS ONE 11(8): e0158542.doi:10.1371/journal.pone.0158542.

Varanidae

Varanidae spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Böhme, W. (2003). Checklist of the living monitor lizards of the world (family Varanidae) Zoologische Verhandelingen, Leiden, 341: 1–43.

w połączeniu z

Koch, A., Auliya, M. i Ziegler, T. (2010.: Updated Checklist of the living monitor lizards of the world (Squamata: Varanidae). - Bonn zoological Bulletin, 57 (2): 127–136.

Varanidae

Varanus bangonorum

Varanus dalubhasa

Varanus samarensis

Welton, L. J., Travers, S. L., Siler, C. D. i Brown, R. M. (2014). Integrative taxonomy and phylogeny-based species delimitation of Philippine water monitor lizards (Varanus salvator complex) with descriptions of two new cryptic species. Zootaxa, 3881 (3): 201–227.

Varanidae

Varanus douarrha

Varanus indicus

WEIJOLA, V., KRAUS, F., VAHTERA, V., LINDQVIST, C. i DONNELLAN, S.C. (2017): Reinstatement of Varanus douarrha Lesson, 1830 as a valid species with comments on the zoogeography of monitor lizards (Squamata: Varanidae) in the Bismarck Archipelago, Papua New Guinea. - Australian Journal of Zoology, doi: 10.1071/ZO16038.

Varanidae

Varanus semotus

WEIJOLA, V., DONNELLAN, S.C. i LINDQVIST, C. (2016): A new blue-tailed monitor lizard (Reptilia, Squamata, Varanus) of the Varanus indicus group from Mussau Island, Papua New Guinea. - ZooKeys 568: 129–154, doi: 10.3897/zookeys.568.6872.

Varanidae

Varanus hamersleyensis

Maryan, B., Oliver, P. M., Fitch, A. J. i O’Connell, M. (2014). Molecular and morphological assessment of Varanus pilbarensis (Squamata: Varanidae), with a description of a new species from the southern Pilbara, Western Australia. Zootaxa, 3768 (2): 139–158.

Varanidae

Varanus nesterovi

Böhme, W., Ehrlich, K., Milto, K. D., Orlov, N. i Scholz, S. (2015). A new species of desert monitor lizard (Varanidae: Varanus: Psammosaurus) from the western Zagros region (Iraq, Iran). Russian Journal of Herpetology, 22 (1): 41–52.

Varanidae

Varanus sparnus

Doughty, P., Kealley, L., Fitch, A. i Donnellan, S. C. (2014). A new diminutive species of Varanus from the Dampier Peninsula, western Kimberley region, Western Australia. Records of the Western Australian Museum, 29: 128–140.

SERPENTES

Loxocemidae spp.

Pythonidae spp.

Boidae spp.

Bolyeriidae spp.

Tropidophiidae spp.

Viperidae spp.

z wyjątkiem zachowania rodzajów Acrantophis, Sanzinia, Calabaria, Lichanura,

oraz z wyjątkiem gatunków wymienionych poniżej

McDiarmid, R. W., Campbell, J. A. i Touré, T. A. (1999). Snake Species of the World. A Taxonomic and Geographic Reference. Tom 1, Washington, D.C. (The Herpetologists’ League).

Boidae

Candoia paulsoni

Candoia superciliosa

Smith, H. M., Chiszar, D., Tepedelen, K. i van Breukelen, F. (2001). A revision of the bevelnosed boas (Candoia carinata complex) (Reptilia: Serpentes). Hamadryad, 26 (2): 283–315.

Boidae

Corallus batesii

Henderson, R. W., Passos, P. i Feitosa, D. (2009). Geographic variation in the Emerald Treeboa, Corallus caninus (Squamata: Boidae). Copeia, 2009 (3): 572–582.

Boidae

Epicrates crassus

Epicrates assisi

Epicrates alvarezi

Passos, P. i Fernandes, R. (2008). Revision of the Epicrates cenchria complex (Serpentes: Boidae). Herpetological Monographs, 22: 1–30.

Boidae

Epicrates cenchria

Epicrates maurus

Chilabothrus spp.

REYNOLDS, R.G., NIEMILLER, M.L., HEDGES, S.B., DORNBURG, A., PUENTE-ROLÓN, A.R. i REVELL, L.J. (2013): Molecular phylogeny and historical biogeography of West Indian boid snakes (Chilabothrus). Molecular Phylogenetics and Evolution 68(3):461–470. doi:10.1016/j.ympev.2013.04.02

Boidae

Eryx borrii

Lanza, B. i Nistri, A. (2005). Somali Boidae (genus Eryx Daudin 1803) and Pythonidae (genus Python Daudin 1803) (Reptilia Serpentes). Tropical Zoology, 18 (1): 67–136.

Boidae

Eunectes beniensis

Dirksen, L. (2002). Anakondas. NTV Wissenschaft.

Colubridae

Xenochrophis piscator 

Xenochrophis schnurrenbergeri 

Xenochrophis tytleri

Vogel, G. i David, P. (2012). A revision of the species group of Xenochrophis piscator (Schneider, 1799) (Squamata: Natricidae). Zootaxa, 3473: 1–60.

Elapidae

Micrurus ruatanus

McCranie, J. R. (2015). A checklist of the amphibians and reptiles of Honduras, with additions, comments on taxonomy, some recent taxonomic decisions, and areas of further studies needed. Zootaxa, 3931 (3): 352–386.

Elapidae

Naja atra

Naja kaouthia

Wüster, W. (1996). Taxonomic change and toxinology: systematic revisions of the Asiatic cobras (Naja naja species complex). Toxicon, 34: 339–406.

Elapidae

Naja mandalayensis

Slowinski, J. B. i Wüster, W. (2000). A new cobra (Elapidae: Naja) from Myanmar (Burma). Herpetologica, 56: 257–270.

Elapidae

Naja oxiana

Naja philippinensis

Naja sagittifera

Naja samarensis

Naja siamensis

Naja sputatrix

Naja sumatrana

Wüster, W. (1996). Taxonomic change and toxinology: systematic revisions of the Asiatic cobras (Naja naja species complex). Toxicon, 34: 339–406.

Pythonidae

Leiopython bennettorum

Leiopython biakensis

Leiopython fredparkeri

Leiopython huonensis

Leiopython hoserae

Schleip, W. D. (2008). Revision of the genus Leiopython Hubrecht 1879 (Serpentes: Pythonidae) with the redescription of taxa recently described by Hoser (2000) and the description of new species. Journal of Herpetology, 42 (4): 645–667.

Pythonidae

Malayopython reticulatus

Malayopython timoriensis

REYNOLDS, R.G., NIEMILLER, M.L, AND REVELL, L.J. (2014): Toward a Tree-of-Life for the boas and pythons: Multilocus species-level phylogeny with unprecedented taxon sampling. Molecular Phylogenetics and Evolution 71: 201–213.

Pythonidae

Morelia clastolepis

Morelia kinghorni

Morelia nauta

Morelia tracyae

Harvey, M. B., Barker, D. B., Ammerman, L. K. i Chippindale, P. T. (2000). Systematics of pythons of the Morelia amethistina complex (Serpentes: Boidae) with the description of three new species. Herpetological Monographs, 14: 139–185.

Pythonidae

Python bivittatus

Python molurus

Jacobs, H. J., Auliya, M. i Böhme, W. (2009). Zur Taxonomie des Dunklen Tigerpythons, Python molurus bivittatus KUHL, 1820, speziell der Population von Sulawesi. Sauria, 31: 5–16.

Pythonidae

Python breitensteini 

Python brongersmai

Keogh, J. S., Barker, D. G. i Shine, R. (2001). Heavily exploited but poorly known: systematics and biogeography of commercially harvested pythons (Python curtus group) in Southeast Asia. Biological Journal of the Linnean Society, 73: 113–129.

Pythonidae

Python kyaiktiyo

Zug, G.R., Grotte, S. W. i Jacobs, J. F. (2011). Pythons in Burma: Short-tailed python (Reptilia: Squamata). Proceedings of the biological Society of Washington, 124 (2): 112–136.

Pythonidae

Python natalensis

Broadley, D. G. (1999). The southern African python, Python natalensis A. Smith 1840, is a valid species. African Herp News, 29: 31–32.

Tropidophiidae

Tropidophis spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Hedges, S.B. (2002): Morphological variation and the definition of species in the snake genus Tropidophis (Serpentes, Tropidophiidae). Bulletin of the Natural History Museum, London (Zoology), 68 (2): 83–90.

Tropidophiidae

Tropidophis celiae

Hedges, B. S., Estrada, A. R. i Diaz, L. M. (1999): New snake (Tropidophis) from western Cuba. Copeia, 1999 (2): 376–381. 

Tropidophiidae

Tropidophis grapiuna

Curcio, F. F., Sales Nunes, P. M., Suzart Argolo, A. J., Skuk, G. i Rodrigues, M. T. (2012). Taxonomy of the South American dwarf boas of the genus Tropidophis Bibron, 1840, with the description of two new species from the Atlantic forest (Serpentes: Tropidophiidae). Herpetological Monographs, 26 (1): 80–121.

Tropidophiidae

Tropidophis hendersoni

Hedges, B. S. i Garrido, O. (2002). A new snake of the genus Tropidophis (Tropidophiidae) from Eastern Cuba Journal of Herpetology, 36:157–161.

Tropidophiidae

Tropidophis morenoi

Hedges, B. S., Garrido, O. i Diaz, L. M. (2001). A new banded snake of the genus Tropidophis (Tropidophiidae) from north-central Cuba. Journal of Herpetology, 35: 615–617.

Tropidophiidae

Tropidophis preciosus

Curcio, F. F., Sales Nunes, P. M., Suzart Argolo, A. J., Skuk, G. i Rodrigues, M. T. (2012). Taxonomy of the South American dwarf boas of the genus Tropidophis Bibron, 1840, with the description of two new species from the Atlantic forest (Serpentes: Tropidophiidae). Herpetological Monographs, 26 (1): 80–121.

Tropidophiidae

Tropidophis spiritus

Hedges, B. S. i Garrido, O. (1999). A new snake of the genus Tropidophis (Tropidophiidae) from central Cuba. Journal of Herpetology, 33: 436–441.

Tropidophiidae

Tropidophis xanthogaster

Domínguez, M., Moreno, L. V. i Hedges, S. B. (2006). A new snake of the genus Tropidophis (Tropidophiidae) from the Guanahacabibes Peninsula of Western Cuba. Amphibia-Reptilia, 27 (3): 427–432.

Viperidae

Atheris desaixi

Bitis worthingtoni 

UETZ, P., FREED, P. i HŎSEK, J. (red.) (2016): Informacje o gatunku pochodzące z „The Reptile Database”, wersja z dnia 15 sierpnia 2016 r., dostęp z dnia 11 maja 2017 r. Zob. załącznik 2 do AC29 Doc.35. na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/29/E-AC29-35-A2.pdf  

Viperidae

Montivipera wagneri

GARRIGUES, T., DAUGA, C., FERQUEL, E., VALÉRIE CHOUMET, V. i FAILLOUX, A-B. (2005): Molecular

phylogeny of Vipera Laurenti, 1768 and the related genera Macrovipera (Reuss, 1927) and Daboia (Gray, 1842), with comments about neurotoxic Vipera aspis aspis populations. Molecular Phylogenetics and Evolution 35(1): 35–47.

Viperidae

Protobothrops mangshanensis

SNETKOV, P.B. i ORLOV, N.L. (2017) Phylogenetic Analysis of Old World Viperid Snakes (Serpentes, Viperidae) Based on Skeletal Morphology. Russian Journal of Herpetology, 24(1):22–34.

Viperidae

Pseudocerastes urarachnoides

UETZ, P., FREED, P., AGUILAR, R. i HÖSEK, J. (red.) (2022): Taxonomic Checklist of Reptile taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties (Genewa, sierpień 2019 r.). Informacje o gatunku pochodzące    z bazy danych Reptile. https://cites.org/sites/default/files/eng/resources/checklists/Checklist_Reptiles_Added_CoP18lr_CITE S.pdf

TESTUDINES

Nazwy rzędu Testudines

Wermuth, H. i Mertens, R. (1996) (reprint). Schildkröte, Krokodile, Brückenechsen. xvii + 506 s. Jena (Gustav Fischer Verlag).

Nazwy gatunków i rodzin – z wyjątkiem zachowania następujących nazw: Mauremys iversoni, Mauremys pritchardi, Ocadia glyphistoma, Ocadia philippeni, Sacalia pseudocellata oraz z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Fritz, U. i Havaš, P. (2007): Checklist of Chelonians of the World. Vertebrate Zoology, 57 (2): 149‑368. Drezno. ISSN 1864-5755 [bez dodatku]

Emydidae

Graptemys pearlensis

Ennen, J. R., Lovich, J. E., Kreiser, B. R., Selman, W. i Qualls, C. P. (2010). Genetic and morphological variation between populations of the Pascagoula Map Turtle (Graptemys gibbonsi) in the Pearl and Pascagoula Rivers with description of a new species. Chelonian Conservation and Biology, 9 (1): 98–113.

Geoemydidae

Batagur affinis

Praschag, P., Sommer, R. S., Mccarthy, C., Gemel, R. i Fritz, U. (2008). Naming one of the world's rarest chelonians, the southern Batagur. Zootaxa, 1758: 61–68.

Geoemydidae

Batagur borneoensis

Batagur dhongoka

Batagur kachuga

Batagur trivittata

Praschag, P., Hundsdörfer, A. K. i Fritz, U. (2007). Phylogeny and taxonomy of endangered South and South-east Asian freshwater turtles elucidated by mtDNA sequence variation (Testudines: Geoemydidae: Batagur, Callagur, Hardella, Kachuga, Pangshura). Zoologica Scripta, 36: 429‑442.

Geoemydidae

Cuora bourreti

Cuora picturata

Spinks, P. Q., Thomson, R. C., Zhang, Y.P., Che, J., Wu, Y. i Shaffer, H. B. (2012). Species boundaries and phylogenetic relationships in the critically endangered Asian box turtle genus Cuora. Molecular Phylogenetics and Evolution, 63: 656–667. doi:10.1016/j.ympev.2012.02.014.

Geoemydidae

Cyclemys enigmatica

Cyclemys fusca

Cyclemys gemeli

Cyclemys oldhamii

Fritz, U., Guicking, D., Auer, M., Sommer, R. S., Wink, M. i Hundsdörfer, A. K. (2008). Diversity of the Southeast Asian leaf turtle genus Cyclemys: how many leaves on its tree of life? Zoologica Scripta, 37: 367–390.

Geoemydidae

Malayemys khoratensis

IHLOW, F., VAMBERGER, M., FLECKS, M., HARTMANN, T., COTA, M., MAKCHAI, S., MEEWATTANA, P., DAWSON, J.E., KHENG, L., RÖDDER, D. i FRITZ, U. (2016). Integrative taxonomy of Southeast Asian snail-eating turtles (Geoemydidae: Malayemys) reveals a new species and mitochondrial introgression. PLoS ONE 11(4): e0153108:1-26.

Geoemydidae

Mauremys reevesii

Barth, D., Bernhard, D., Fritzsch, G. i U. Fritz (2004). The freshwater turtle genus Mauremys (Testudines, Geoemydidae) – a textbook example of an east-west disjunction or a taxonomic misconcept? Zoologica Scripta, 33: 213–221.

Testudinidae

Centrochelys sulcata

Turtle Taxonomy Working Group [van Dijk, P. P., Iverson, J. B., Rhodin, A. G. J., Shaffer, H. B. i Bour, R.]. (2014): Turtles of the world, 7TH edition: Annotated checklist of taxonomy, synonymy, distribution with maps, and conservation status. 000.v7. Chelonian Research Monographs, 5 doi: 10.3854/crm.5.000.checklist.v7.2014.

Testudinidae

Chelonoidis carbonarius

Chelonoidis denticulatus

Chelonoidis niger

Olson, S .L. i David, N. (2014). The gender of the tortoise genus Chelonoidis Fitzinger, 1835 (Testudines: Testudinidae). - Proceedings of the Biological Society of Washington, 126(4): 393–394.

Testudinidae

Chersobius spp.

HOFMEYR, M.D. i BRANCH, W.R. (2018). The padloper’s tortuous path (Chelonia: Testudinidae): Two genera, not one. African Journal of Herpetology, 2018:1-15. https://doi.org/10.1080/21564574.2017.1398187

Testudinidae

Gopherus evgoodei

Gopherus morafkai

Murphy, R. W., Berry, K. H., Edwards, T., Leviton, A. E., Lathrop, A. i Riedle, J. D. (2011). The dazed and confused identity of Agassiz’s land tortoise, Gopherus agassizii (Testudines, Testudinidae) with the description of a new species, and its consequences for conservation. Zookeys, 113: 39–71.

Testudinidae

Kinixys nogueyi

Kinixys zombensis

Kindler, C., Branch, W. R., Hofmeyr, M. D., Maran, J., Široký, P., Vences, M., Harvey, J., Hauswaldt, J. S., Schleicher, A., Stuckas, H. i Fritz, U. (2012). Molecular phylogeny of African hinge-back tortoises (Kinixys): implications for phylogeography and taxonomy (Testudines: Testudinidae). Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research, 50: 192–201.

Trionychidae

Lissemys ceylonensis

Praschag, P., Stuckas, H., Päckert, M., Maran, J. i Fritz, U. (2011). Mitochondrial DNA sequences suggest a revised taxonomy of Asian flapshell turtles (Lissemys Smith, 1931) and the validity of previously unrecognized taxa (Testudines: Trionychidae). Vertebrate Zoology, 61 (1): 147–160.

Trionychidae

Nilssonia gangeticus

Nilssonia hurum

Nilssonia leithii

Nilssonia nigricans

Praschag, P., Hundsdörfer, A.K., Reza, A.H.M.A. i Fritz, U. (2007). Genetic evidence for wild-living Aspideretes nigricans and a molecular phylogeny of South Asian softshell turtles (Reptilia: Trionychidae: Aspideretes, Nilssonia). Zoologica Scripta, 36:301-310.

AMPHIBIA

Amphibia spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Frost, D. R. (red.) (2015). Taxonomic Checklist of Amphibian Species listed in the CITES Appendices and the Annexes of EC Regulation 338/97 (Taksonomiczna lista kontrolna gatunków płazów wymienionych w załącznikach do CITES oraz załącznikach do rozporządzenia (WE) nr 338/97). Informacje o gatunkach pochodzące z Amphibian Species of the World: a taxonomic and geographic reference, źródło internetowe, wersja 6.0 z maja 2015 r. z dodatkowymi uwagami eksperta ds. nomenklatury Komitetu CITES ds. Zwierząt. Zob. załącznik 5 do CoP17 Doc. 81.1 na stronie

https://cites.org/sites/default/files/eng/cop/17/WorkingDocs/E-CoP17-81-01-A5.pdf  

Anura: Microhylidae:
Dyscophus
spp. i Scaphiophryne spp.;
Telmatobiidae:

Telmatobius culeus

FROST, D. R. (red.) (2017). Informacje o gatunkach pochodzące z Amphibian Species of the World: a taxonomic and geographic reference, źródło internetowe, wersja 6.0, dostęp z dnia 12 maja 2017 r. Zob. załącznik 3 do AC29 Doc.35 na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/29/E-AC29-35-A3.pdf  

Bufonidae

Sclerophrys channingi

Sclerophrys superciliaris

OHLER, A. i DUBOIS, A. (2016): The identity of the South African toad Sclerophrys capensis Tschudi, 1838 (Amphibia, Anura). PeerJ 4(e1553): 1–13.

Dendrobatidae

Ameerega munduruku

NEVES, M.DE O., DA SILVA, L.A., AKIEDA, P.S., CABRERA, R., KOROIVA, R. i SANTANA, D.J. (2017): A new species of poison frog, genus Ameerega (Anura: Dendrobatidae), from the southern Amazonian rain forest. Salamandra 53(4): 485–493.

Dendrobatidae

Ameerega shihuemoy

Serrano-Rojas, S.J., Whitworth, A., Villacampa-Ortega, J., von May, R., Gutiérrez, R.C., Padial, J.M. i CHAPARRO, J.C. (2017): A new species of poison-dart frog (Anura: Dendrobatidae) from Manu province, Amazon region of southeastern Peru, with notes on its natural history, bioacoustics, phylogenetics, and recommended conservation status. Zootaxa 4221(1): 71–94.

Dendrobatidae

Andinobates victimatus

Márquez, R., Mejía-Vargas, D., Palacios-Rodríguez, P., Ramírez-Castañeda, V. i Amézquita, A.

(2017): A new species of Andinobates (Anura: Dendrobatidae) from the Urabá region of Colombia. Zootaxa 4290(3): 531–546.

Dendrobatidae

Epipedobates maculatus

Paruwrobates andinus

Paruwrobates erythromos

GRANT, T., RADA, M., ANGANOY-CRIOLLO, M. A., BATISTA, A., DOS S. DIAS, P.H., JECKEL, A.M., MACHADO, D.J. i RUEDA-ALMONACID, J.V. (2017): Phylogenetic systematics of dart-poison frogs and their relatives revisited (Anura: Dendrobatoidea). South American Journal of Herpetology 12 (wydanie specjalne): 1–90

Dendrobatidae

Oophaga anchicayensis

Oophaga andresi

Oophaga solanensis

POSSO-TERRANOVA, A. i ANDRÉS, J. (2018): Multivariate species boundaries and conservation of harlequin poison frogs. Molecular Ecology 27: 3432–3451. DOI: 10.1111/mec.14803.

Hylidae

Agalychnis lemur

FROST, D.R. (2021): Amphibian Species of the World: źródło internetowe. wersja 6.1. doi.org/10.5531/db.vz.0001

Hylidae

Agalychnis terranova

RIVERA-CORREA, M., DUARTE-CUBIDES, F., RUEDA-ALMONACID, J.V. i DAZA-R., J.M. (2013): A new red-eyed treefrog of Agalychnis (Anura: Hylidae: Phyllomedusinae) from middle Magdalena River valley of Colombia with comments on its phylogenetic position. Zootaxa 3636 (1): 85–100.

CAUDATA

Salamandridae

Echinotriton spp.

Paramesotriton spp.

Tylototriton spp.

FROST, D. R. (red.) (2022). Taxonomic Checklist of Amphibian taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties (Genewa, sierpień 2019). Informacje o gatunkach pochodzące z Amphibian Species of the World: źródło internetowe, wersja 6.1, dostęp z dnia 5 maja 2020 r. dla gatunków z rodzaju Echinotriton oraz z dnia 5 maja 2022 r. w przypadku gatunków rodzaju Tylototriton. https://cites.org/sites/default/files/eng/resources/checklists/Checklist_Amphibian_Added_CoP18_CITES.pdf  

ELASMOBRANCHII, ACTINOPTERI, COELACANTHI I DIPNEUSTI

Wszystkie gatunki ryb, z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Eschmeyer, W.N. i Fricke, R. (red.) (2015): Taxonomic Checklist of Fish species listed in the CITES Appendices and the Annexes of EC Regulation 338/97 (Taksonomiczna lista kontrolna gatunków ryb wymienionych w załącznikach do Konwencji CITES oraz załącznikach do rozporządzenia (WE) nr 338/97) (Elasmobranchii, Actinopteri, Coelacanthi, i Dipneusti, z wyjątkiem rodzaju Hippocampus). Informacje pochodzące z Catalog of Fishes, źródło internetowe, aktualizacja wersji z dnia 3 lutego 2015 r. Zob. załącznik 6 do CoP17 Doc. 81.1 na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/cop/17/WorkingDocs/E-CoP17-81-01-A6.pdf

Elasmobranchii: Carcharhiniformes: Carcharhinidae: Carcharhinus falciformis;

Lamniformes: Alopiidae: Alopias spp.;

Myliobatiformes: Myliobatidae: Mobula spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej;

Potamotrygonidae:
Potamotrygon spp.;

Actinopteri: Perciformes: Pomacanthidae: Holacanthus clarionensis

ESCHMEYER, W. N., FRICKE, R. i VAN DER LAAN, R. (red.) (2017): Informacje pochodzące z Catalog of Fishes: Genera, Species, References, źródło internetowe, wersja z dnia 28 kwietnia 2017 r., dostęp z dnia 12 maja 2017 r. Zob. załącznik 4 do AC29 Doc.35 na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/29/E-AC29-35-A4.pdf  

Elasmobranchii: Lamniformes: Lamnidae: Isurus spp.;

Rhinopristiformes: Glaucostegidae: Glaucostegus spp.;

Rhinidae spp.

ESCHMEYER, W.N., R. FRICKE i R. VAN DER LAAN (red.) (2019) Taxonomic Checklist of Fish taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties. Species information extracted from Catalog of Fishes: Genera, Species, References, źródło internetowe, wersja z dnia 4 maja 2020 r., dostęp z dnia 5 maja 2020 r. Zob. załącznik 3 do AC31 Doc. 37 na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/31/Docs/E-AC31-37-A3.pdf

Mobulidae

Mobula alfredi

Mobula birostris

Mobula hypostoma (incl. M. rochebrunei)

WHITE, W. T. i P. R. LAST. (2016). DEVILRAYS, FAMILY MOBULIDAE. S. 741-749 IN LAST, P. R., W. T. WHITE, M. R. DE CARVALHO, B. SÉRET, M. F. W. STEHMANN i G. J. P. NAYLOR (RED.). Rays of the World. CSIRO Publishing, Comstock Publishing Associates. i-ix + 1-790

Rhinobatidae

Rhinobatidae spp.

LAST, P. R., SERET, B. i NAYLOR, G. J. (2016a): A new species of guitarfish, Rhinobatos borneensis sp. nov. with a redefinition of the family-level classification in the order Rhinopristiformes (Chondrichthyes: Batoidea). Zootaxa, 4117(4), 451-475. DOI 10.11646/zootaxa.4117.4.1

Rhinobatidae

Acroteriobatus andysabini

Acroteropbatus stehmanni

WEIGMANN, S., EBERT, D. A. i SÉRET, B. (2021): Resolution of the Acroteriobatus leucospilus species complex, with a redescription of A. leucospilus (Norman, 1926) and descriptions of two new western Indian Ocean species of Acroteriobatus (Rhinopristiformes, Rhinobatidae). Mar. Biodivers., 51(4), 1-30.

Rhinobatidae

Acroteriobatus omanensis

LAST, P. R., HENDERSON, A. C. i NAYLOR, G. J. (2016b): Acroteriobatus omanensis (Batoidea: Rhinobatidae), a new guitarfish from the Gulf of Oman. Zootaxa, 4144(2): 276–286.

Rhinobatidae

Pseudobatos buthi

RUTLEDGE, K. M. (2019): A new guitarfish of the genus Pseudobatos (Batoidea: Rhinobatidae) with key to the guitarfishes of the Gulf of California. Copeia, 107(3): 451–463.

Rhinobatidae

Rhinobatos austini

EBERT, D. A. i GON, O. (2017): Rhinobatos austini n. sp., a new species of guitarfish (Rhinopristiformes: Rhinobatidae) from the southwestern Indian Ocean. Zootaxa, 4276(2), 204-214.

Rhinobatidae

Rhinobatos manai

WHITE, W. T., LAST, P. R. i NAYLOR, G. J. (2016): Rhinobatos manai sp. nov., a new species of guitarfish (Rhinopristiformes: Rhinobatidae) from New Ireland, Papua New Guinea. Zootaxa, 4175(6), 588-600.

Rhinobatidae

Rhinobatos ranongensis

LAST, P.R., SERET, B. i NAYLOR, G.J. (2019): Description of Rhinobatos ranongensis sp. nov. (Rhinopristiformes: Rhinobatidae) from the Andaman Sea and Bay of Bengal with a review of its northern Indian Ocean congeners. Zootaxa, 4576(2), 257–287.

SYNGNATHIFORMES

Syngnathidae

Hippocampus spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Lourie, S. A., Pollom, R. A. and Foster, S. J. (2016). A global revision of the Seahorses Hippocampus Rafinesque 1810 (Actinopterygii: Sygnathiformes): Taxonomy and biogeography with recommendations for further research. Zootaxa, 4146 (1): 1–066.

Syngnathidae

Hippocampus casscsio

ZHANG, Y-H., QIN, G., WANG, X. i LIN, Q. (2016): A new species of seahorse (Teleostei: Syngnathidae) from the South China Sea. Zootaxa 4170 (2): 384–392. http://doi.org/10.11646/zootaxa.4170.2.11

Syngnathidae

Hippocampus haema

HAN, S-Y., KIM, J-K., KAI, Y. i SENOU, H. (2017): Seahorses of the Hippocampus coronatus complex: taxonomic revision, and description of Hippocampus haema, a new species from Korea and Japan (Teleostei, Syngnathidae). ZooKeys 712: 113–139. doi: 10.3897/zookeys.712.14955

Syngnathidae

Hippocampus japapigu

SHORT, G., SMITH, R., MOTOMURA, H., HARASTI, D. i HAMILTON, H. (2018): Hippocampus japapigu, a new species of pygmy seahorse from Japan, with a redescription of H. pontohi (Teleostei, Syngnathidae). ZooKeys 779: 27–49. doi: 10.3897/zookeys.779.24799

ARACHNIDA

ARANEAE

Theraphosidae

Aphonopelma pallidum

Brachypelma spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Platnick, N. (2006). Taksonomiczna lista kontrolna gatunków pająków objętych Konwencją CITES. Informacje pochodzące z The World Spider Catalog, źródło internetowe, wersja 6.5 z dnia 7 kwietnia 2006 r. [dostępne na stronie http://www.cites.org/common/docs/Res/12_11/spider_checklist.pdf ]

Theraphosidae

Brachypelma albiceps

Brachypelma smithi

Tliltocatl albopilosum

Tliltocatl epicureanum

Tliltocatl kahlenbergi

Tliltocatl sabulosum

Tliltocatl schroederi

Tliltocatl vagans

Tliltocatl verdezi

MENDOZA, J. i FRANCKE, O. (2019): Systematic revision of Mexican threatened tarantulas Brachypelma (Araneae: Theraphosidae: Theraphosinae), with a description of a new genus, and implications on the conservation. Zoological Journal of the Linnean Society, 2019, XX; 1–66. http://zoobank.orgurn:lsid:zoobank.org:pub:E4D09A17-444F-45A0-95DB-059ECA175569

Theraphosidae

Poecilotheria spp., z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

WORLD SPIDER CATALOG. (2020). Taxonomic Checklist of Spider taxa included in the Appendices at the 18th Meeting of the Conference of the Parties. Species information extracted from the World Spider Catalog (2020). Wersja 21.0. Natural History Museum Bern, online at http://wsc.nmbe.ch, dostęp z dnia 5 maja 2020 r. doi: 10.24436/2. Zob. załącznik 4 do AC31 Doc. 37 na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/31/Docs/E-AC31-37-A4.pdf

Theraphosidae

Poecilotheria srilankensis

NANAYAKKARA, R. P., GANEHIARACHI, G. A. S. M., KUSUMINDA, T., VISHVANATH, N., KARUNARATNE, M. K. i KIRK, P. (2019): A new species of tiger spider in the genus Poecilotheria Pocock, 1899 (Araneae: Theraphosidae) from Belihuloya, Sri Lanka. Journal of the British Tarantula Society 34(3): 3–17

Theraphosidae

Poecilotheria tigrinawesseli

SHERWOOD, D. (2019): Revised taxonomical placement of Poecilotheria chaojii Mirza, Sanap i Bhosale, 2014 (Araneae: Theraphosidae). Arachnology 18(1): 19-21. doi:10.13156/arac.2018.18.1.19

Theraphosidae

Sericopelma angustum

Sericopelma embrithes

GABRIEL, R. i LONGHORN, S.J. 2015. Revised generic placement of Brachypelma embrithes (Chamberlin i Ivie, 1936) and Brachypelma angustum Valerio, 1980, with definition of the taxonomic features for identification of female Sericopelma Ausserer, 1875 (Araneae, Theraphosidae). ZooKeys 526: 75–104.

SCORPIONES

Scorpionidae

Pandinus spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Lourenço, W. R. i Cloudsley-Thompson, J. C. (1996). Recognition and distribution of the scorpions of the genus Pandinus Thorell, 1876 accorded protection by the Washington Convention. Biogeographica, 72 (3): 133–143.

Scorpionidae

Pandinus camerounensis

Pandinus roeseli

Lourenço, W. R. (2014). Further considerations on the identity and distribution of Pandinus imperator (C. L. Koch, 1841) and description of a new species from Cameroon (Scorpiones: Scorpionidae). Entomologische Mitteilungen aus dem Zoologischen Museum Hamburg, 17 (192): 139–151.

INSECTA

COLEOPTERA

Lucanidae

Colophon spp. z wyjątkiem taksonów wymienionych poniżej

Bartolozzi, L. (2005). Description of two new stag beetle species from South Africa (Coleoptera: Lucanidae). African Entomology, 13 (2): 347–352.

Lucanidae

Colophon deschodti

Colophon eastmani

Colophon nagaii

Colophon switalae

Colophon struempheri

JACOBS, C.T., SCHOLTZ, C.H., & STRÜMPHER, W.P. 2015. Taxonomy of Colophon Gray (Coleoptera: Lucanidae): new species and a status change. Zootaxa 4057(1): 135–142. Doi 10.11646/zootaxa.4057.1.9

LEPIDOPTERA

Papilionidae

Achillides spp. [tylko gatunek z Filipin]

Page, M. G. P. i Treadaway, C. G. (2004). Papilionidae of the Philippine Island. W: E. Bauer, i T. Frankenbach, red.). Butterflies of the world, Supplement 8. Goecke i Evers, Keltern. 58 s.

Papilionidae

Ornithoptera spp.

Trogonoptera spp.

Troides spp.

Matsuka, H. (2001). Natural History of Birdwing Butterflies. 367 s. Tokyo (Matsuka Shuppan).(ISBN 4-9900697-0-6).

HIRUDINOIDEA

ARHYNCHOBDELLIDA

Hirudinidae

Hirudo medicinalis

Hirudo verbana

Nesemann, H. i Neubert, E. (1999). Annelida: Clitellata: Branchiobdellida, Acanthobdellea, Hirudine. Süßwasserfauna von Mitteleuropa, 6 (2), 178 s., Berlin (Spektrum Akad. Verlag). ISBN 3-8274-0927-6.

BIVALVIA

VENEROIDA

Tridacnidae

Tridacna lorenzi

Tridacna mbalavuana (incl. T. tevoroa)

Tridacna noae (incl. T. ningaloo)

Tridacna squamosina

WoRMS Editorial Board. 2018. Genus Tridacna.

CEPHALOPODA

Nautilidae

Nautilidae spp.

Informacje o rodzinie, rodzaju i gatunku pochodzące z systemu Integrated Taxonomic Information Service (ITIS), źródło internetowe. Zob. załącznik 5 do AC29 Doc.35 na stronie https://cites.org/sites/default/files/eng/com/ac/29/E-AC29-35-A5.pdf  

ANTHOZOA I HYDROZOA

Wszystkie gatunki objęte Konwencją CITES

Taxonomic Checklist of all CITES listed Coral Species (Taksonomiczna lista kontrolna wszystkich gatunków koralowców objętych Konwencją CITES), w oparciu o informacje zebrane przez UNEP-WCMC w 2012 r.



F L O R A

Przedmiotowy takson

Odniesienie taksonomiczne

AMARYLLIDACEAE, PRIMULACEAE

Cyclamen, Galanthus i Sternbergia

Davis, A.P. i in. (1999). CITES Bulb Checklist, opracowanie: the Royal Botanic Gardens, Kew, United Kingdom of Great Britain and Northern Ireland) jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Cyclamen, Galanthus i Sternbergia. 

APOCYNACEAE

Pachypodium spp.

CITES Aloe and Pachypodium Checklist (U. Eggli i in., 2001, opracowanie: Städtische Sukkulenten-Sammlung, Zurych, Szwajcaria, we współpracy z Royal Botanic Gardens, Kew, Zjednoczone Królestwo Wielkiej Brytanii i Irlandii Północnej) i aktualizacja: An Update and Supplement to the CITES Aloe & Pachypodium Checklist [J. M. Lüthy (2007), CITES Management Authority of Switzerland, Berno, Szwajcaria] jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Aloe i Pachypodium.

Hoodia spp.

Plants of Southern Africa: an annotated checklist. G. Germishuizen i N. L. Meyer (red.) (2003): Strelitzia 14: 150–151. National Botanical Institute, Pretoria, Republika Południowej Afryki jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Hoodia.

CACTACEAE

Wszystkie Cactaceae, z wyjątkiem Aztekium valdezii

CITES Cactaceae Checklist wydanie trzecie (2016 r., opracowanie: D. Hunt) jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Cactaceae oraz zmiany i aktualizacje przedstawione w A Supplement to the CITES Cactaceae Checklist wydanie trzecie 2016 r. (Hunt, D. 2018). Wykaz i suplement można znaleźć na stronie internetowej Royal Botanic Gardens, Kew, UK pod adresem „ goo.gl/M26yL8 ”. 

CACTACEAE

Aztekium valdezii

Marcía, C.G.V., Vázquez, M.A.A. i Montes, S.A. (2013). A new species of Aztekium (Cactaceae) from Nuevo León, Mexico. Xerophilia, wydanie specjalne 2: 3–25. Dostępne na stronie internetowej: https://cites.org/sites/default/files/eng/com/nc/flora/Aztekium-valdezii_Xerophilia-Special-Issue-No.-2-2013.pdf

CYCADACEAE, STANGERIACEAE i ZAMIACEAE

Wszystkie Cycadaceae, Stangeriaceae i Zamiaceae

The World List of Cycads: CITES and Cycads: Checklist 2013 (Roy Osborne, Michael A. Calonje, Ken D. Hill, Leonie Stanberg and Dennis Wm. Stevenson) w CITES and Cycads a user’s guide (Rutherford, C. i in., Royal Botanic Gardens, Kew. UK 2013), jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Cycadaceae, Stangeriaceae and Zamiaceae.

DICKSONIACEAE

Amerykańskie gatunki Dicksonia

Dicksonia species of the Americas (2003, opracowanie: Botanischer Garten Bonn oraz Bundesamt für Naturschutz, Bonn, Niemcy) jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Dicksonia.

DROSERACEAE, NEPENTHACEAE, SARRACENIACEAE

Dionaea, Nepenthes i Sarracenia.

CITES Carnivorous Plant Checklist (B. von Arx i in., 2001, Royal Botanic Gardens, Kew,UK) jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Dionaea, Nepenthes i Sarracenia.

EBENACEAE

Diospyros spp. – populacje Madagaskaru (large tree species)

Lowry i in. 2022. Large tree species of Diospyros from Madagascar. Catalogue of Plants of Madagascar. http://legacy.tropicos.org/ProjectWebPortal.aspx?pagename=Diospyros_LT&projectid=17.

Dostępne na stronie internetowej: https://cites.org/sites/default/files/eng/prog/timber/Ebenaceae_Diospyros_spp_populations_of_Madaga   scar_052022.pdf

EUPHORBIACEAE

Gruboszowate gatunki Euphorbia

The CITES Checklist of Succulent Euphorbia Taxa (Euphorbiaceae), wydanie drugie (S. Carter i U. Eggli, 2003, wydane przez Bundesamt für Naturschutz, Bonn, Niemcy) jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków gruboszowatych wilczomleczy.

LEGUMINOSAE

Dalbergia spp.

Cowell C., Williams E., Bullough L.-A., Grey J., Klitgaard B., Govaerts R., Andriambololonera S., Cervantes A., Crameri S., Lima, H.C., Lachenaud O., Li S.-J., Linares J.L., Phillipson P., Rakotonirina N., Wilding N., van der Burgt X., Vatanparast M., Barker A., Barstow M., Beentje H., i Plummer J. 2022. CITES Dalbergia Checklist. Na zlecenie Sekretariatu CITES. Royal Botanic Gardens, Kew, Surrey.

Dostępne w języku angielskim, francuskim i hiszpańskim pod adresem: https://www.kew.org/science/our-science/science-   services/UK-CITES/cites-resources

LEGUMINOSAE

Dipteryx spp.

Carvalho, C.S., de Fraga, N.C., Cardoso, D.B.O.S. i Lima, H.C. 2020. Tonka, baru and cumaru: Nomenclatural overview, typification and updated checklist of Dipteryx (Leguminosae). Taxon. 69(3), s. 582–592

LEGUMINOSAE

Guibourtia pellegriniana

Leonard, J. (1949). Notulae Systematicae IV (Caesalpiniaceae-Amherstieae africanae americanaeque). Bulletin du Jardin Botanique de l'État a Bruxelles 19(4): 383–408. [Guibourtia pellegriniana omówione na s. 405]. https://doi.org/10.2307/3666831

LEGUMINOSAE

Paubrasilia echinata 

Gagnon, E., Bruneau, A., Hughes, C.E., de Queiroz, L. P. i Lewis, G.P. (2016): A new generic system for the pantropical Caesalpinia group (Leguminosae) jako wytyczne przy odniesieniach do nazw taksonu. Źródło można znaleźć pod adresem „ https://phytokeys.pensoft.net/articles.php?id=9203 ”, bezpłatny dostęp, a dodatkowe informacje na temat taksonu można znaleźć pod adresem „ http://floradobrasil.jbrj.gov.br/reflora/listaBrasil

LEGUMINOSAE

Platymiscium pleiostachyum

Bente B. Klitgraard (2005). Platymiscium (Leguminosae: Dalbergieae); biogeography, systematics, morphology, taxonomy and uses. Kew Bulletin. Tom 60, nr 3 (2005), s. 321-400, należy stosować jako wytyczne przy odniesieniach do nazwy tego taksonu. Źródło to jest dostępne na stronie internetowej „ https://www.jstor.org/stable/4111062?seq=1#page_scan_tab_contents ”. Możliwy jest bezpłatny dostęp do tego odniesienia. 

LEGUMINOSAE

Pterocarpus spp.

Royal Botanical Gardens Kew, Plants of the World Online, (POWO, 2022)

Dostępne na stronie internetowej: https://cites.org/sites/default/files/common/docs/Res/12_11/Pterocarpus_POWO_19-1-   2023.pdf

LILIACEAE

Aloe spp.

CITES Aloe and Pachypodium Checklist (U. Eggli i in., 2001, opracowanie: Städtische Sukkulenten-Sammlung, Zurych, Szwajcaria, we współpracy z Royal Botanic Gardens, Kew, Zjednoczone Królestwo Wielkiej Brytanii i Irlandii Północnej) i aktualizacja: An Update and Supplement to the CITES Aloe & Pachypodium Checklist [J. M. Lüthy (2007), CITES Management Authority of Switzerland, Berno, Szwajcaria] jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Aloe i Pachypodium.

LILIACEAE

Aloe spp. — dodatek do istniejącego odniesienia standardowego

Klopper, R.R. 2021. Supplement of aloe spp. names and synonyms. Opracowanie: dr Ronell R KLOPPER, wkład grupy roboczej ds. nomenklatury PC25, dnia 10 czerwca 2021 r. PC25 Com. 5, załącznik.

Dostępne na stronie internetowej: https://cites.org/sites/default/files/eng/com/pc/25/com/E-PC25-Com-005.pdf

MELIACEAE

Khaya spp.

Royal Botanical Gardens Kew, Plants of the World Online, (POWO, 2022)

Dostępne na stronie internetowej: https://cites.org/sites/default/files/common/docs/Res/12_11/Khaya_POWO_19-1-   2023.pdf

ORCHIDACEAE

Orchidaceae – storczyki wymienione w załączniku I: Paphiopedilum spp., Phragmipedium spp., Aerangis ellisii, Cattleya jongheana, Cattleya lobata, Dendrobium cruentum, Mexipedium xerophyticum, Peristeria elata oraz Renanthera imschootiana

Govaerts, R., Caromel, A., Dhanda, S., Davis, F., Pavitt, A., Sinovas, P. i Vaglica, V. (2019). CITES Appendix I Orchid Checklist. wersja druga, Royal Botanic Gardens, Kew, Surrey, and UNEP-WCMC, Cambridge. To źródło należy stosować przy odniesieniach do nazw gatunków Paphiopedilum spp., Phragmipedium spp., Aerangis ellisii, Cattleya jongheana, Cattleya lobata, Dendrobium cruentum, Mexipedium xerophyticum, Peristeria elata i Renanthera imschootiana.

Źródło można znaleźć na stronie internetowej Royal Botanic Gardens, Kew, UK pod adresem „ goo.gl/M26yL8 ”.  

ORCHIDACEAE

Orchidaceae – storczyki wymienione w załączniku II: rodzaje Aerangis (nie A. ellisii), Aerides, Angraecum, Bletilla, Brassavola, Bulbophyllum, Calanthe, Catasetum, Cattleya (nie C. jongheana ani C. lobata), Coelogyne, Comparettia, Cymbidium, Cypripedium, Dendrobium (nie D. cruentum), Disa, Dracula, Encyclia,    Laelia, Masdevallia, Miltonia, Miltoniopsis, Phalaenopsis, Pleione, Renanthera, Rhynchostylis, Rossioglossum, Vanda, i Vandopsis

Dhanda, S., Caromel A., Govaerts R., Pavitt A., Bullough, L.-A. i Hartley, H. 2022. CITES Appendix II Orchid Checklist. Royal Botanic Gardens, Kew, Surrey, i UNEP-WCMC, Cambridge.

Dostępne na stronie internetowej: https://www.kew.org/science/our-science/science-services/UK-CITES/cites-resources  

PALMAE

Dypsis decipiens i Dypsis decaryi.

Proposed Standard Reference for two CITES-listed palms endemic to Madagascar (CVPM 2016) w oparciu o Catalogue of the Vascular Plants of Madagascar zamieszczono w formie pliku pdf na stronie internetowej US Fish & Wildlife Service. To źródło należy stosować przy odniesieniach do Dypsis decipiens i Dypsis decaryi. Zob.: http://www.fws.gov/international/

TAXACEAE

Taxus spp.

World Checklist and Bibliography of Conifers (A. Farjon, 2001) jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Taxus.

ZYGOPHYLLACEAE

Guaiacum spp.

Lista de especies, nomenclatura y distribución en el genero Guaiacum. P. Dávila Aranda i U. Schippmann (2006): Medicinal Plant Conservation 12:50 jako wytyczne przy odniesieniach do nazw gatunków Guaiacum.



Załącznik IX

1. Kody, które należy stosować do wskazania celu transakcji w zezwoleniach i świadectwach, o których mowa w art. 5 ust. 5

B    Hodowla w niewoli lub sztuczne rozmnażanie

E    Cele edukacyjne Jeżeli transakcja ma na celu wykorzystanie w programach edukacyjnych i szkoleniowych lub w celu przedstawienia w instytucji o charakterze głównie edukacyjnym.

G    Ogrody botaniczne

H    Trofea myśliwskie    

P    Organy egzekwowania prawa/wymiar sprawiedliwości/ścigania Jeżeli transakcja ma na celu przekazanie okazów między rządowymi organami egzekwowania prawa, wymiaru sprawiedliwości lub ścigania bądź w celu wsparcia tych organów.

M    Cele medyczne (w tym badania biomedyczne) Jeżeli transakcja ma na celu przeprowadzenie badań medycznych lub weterynaryjnych, diagnostyki, leczenia lub badań, w tym badań biomedycznych.

N    Reintrodukcja lub introdukcja do środowiska naturalnego Jeżeli transakcja ma na celu wzmocnienie i reintrodukcję w naturalnym i historycznym obszarze występowania gatunku, a także introdukcję w celach ochrony, obejmującą wspomagane zasiedlanie i ekologiczne zastąpienie poza naturalnym i historycznym obszarem występowania.

P    Cele osobiste

Q    Wystawy objazdowe (kolekcja próbek, cyrk, menażeria, wystawa roślin, orkiestra lub wystawa muzealna, które są przeznaczone do wystawiania na widok publiczny w celach zarobkowych)

S    Cele naukowe

T    Cele handlowe

Z    Ogrody zoologiczne Jeżeli transakcja ma na celu przemieszczenie okazu do ogrodu zoologicznego lub akwararium lub przez ogród zoologiczny lub akwararium w celu publicznej prezentacji, opieki, reprodukcji, edukacji publicznej i zwiększania wiedzy, badań naukowych, ratownictwa, rehabilitacji lub ochrony.

2. Kody, które należy stosować do wskazania źródła okazów w zezwoleniach i świadectwach, o których mowa w art. 5 ust. 6

W    Okazy schwytane w środowisku naturalnym

R    Okazy zwierząt rozmnożonych w kontrolowanym środowisku, które zostały pozyskane ze środowiska naturalnego jako jaja lub młode osobniki, które w innym przypadku miałyby bardzo niskie prawdopodobieństwo przeżycia do dorosłości

D    Okazy gatunków zwierząt wymienionych w załączniku I do Konwencji, które są hodowane w niewoli do celów handlowych w hodowlach wpisanych do rejestru hodowli, w których hoduje się do celów handlowych gatunki zwierząt wymienione w załączniku I, prowadzonego przez Sekretariat Konwencji, a także ich części i pochodne, oraz okazy gatunków roślin wymienionych w załączniku I do Konwencji, które są sztucznie rozmnażane do celów handlowych zgodnie z rozdziałem XIII rozporządzenia (WE) nr 865/2006, a także ich części i produkty pochodne

A    Rośliny sztucznie rozmnażane zgodnie z rozdziałem XIII rozporządzenia (WE) nr 865/2006, jak również ich części i produkty pochodne

C    Zwierzęta hodowane w niewoli zgodnie z rozdziałem XIII rozporządzenia (WE) nr 865/2006, jak również ich części i produkty pochodne

F    Zwierzęta urodzone w niewoli, lecz dla których kryteria rozdziału XIII rozporządzenia (WE) nr 865/2006 nie są spełnione, jak również ich części i produkty pochodne

I    Skonfiskowane lub zatrzymane okazy 1  

O    Przedkonwencyjne1

U    Źródło nieznane (wymaga uzasadnienia)

X    Próbki pobrane ze środowiska morskiego niepodlegającego jurysdykcji żadnego państwa

Y    Okazy roślin uzyskane z produkcji wspomaganej, które nie są uznawane za „sztucznie rozmnażane” zgodnie z art. 56 i nie są również uznawane za pozyskane w naturze, ponieważ są rozmnażane lub sadzone w środowisku o pewnym stopniu interwencji człowieka do celów produkcji roślinnej”



ZAŁĄCZNIK 2

„ZAŁĄCZNIK XIV

Informacje przekazywane przez hodowlę w celu złożenia wniosku o rejestrację przez Sekretariat Konwencji zgodnie z art. 54a

1)Imię i nazwisko / nazwa oraz adres właściciela i kierownika hodowli.

2)Data utworzenia hodowli:

3)Zaproponowane do rejestracji gatunki zwierząt hodowane w hodowli, wymienione w załączniku 1.

4)Liczba i wiek (jeżeli są znane lub w stosownych przypadkach) samców i samic wchodzących w skład stada hodowlanego.

5)Dowody potwierdzające, że stado hodowlane zostało utworzone zgodnie z art. 54 ust. 2.

6)Obecne stado (liczba, według płci i wieku, utrzymywana dodatkowo oprócz stada hodowlanego, o którym mowa w pkt 4 powyżej).

7)Informacje na temat wskaźnika śmiertelności, w miarę możliwości podane według wieku i płci.

8)Dokumentacja poświadczająca, że hodowla spełnia wymogi określone w art. 54 ust. 4.

9)Roczna liczba wydanego potomstwa (w przeszłości, obecnie i oczekiwana w przyszłości) oraz, w miarę możliwości, informacje na temat:

a)liczby samic wydających potomstwo każdego roku;

b)nietypowych wahań w zakresie rocznej liczby wydanego potomstwa (w tym wyjaśnienie prawdopodobnej przyczyny). 

10)Ocena przewidywanego zapotrzebowania na dodatkowe okazy oraz źródło ich pozyskania w celu zwiększenia liczebności stada hodowlanego służącego powiększeniu zasobów genetycznych populacji żyjących w niewoli, aby uniknąć szkodliwej endogamii (chowu wsobnego).

11)Rodzaj wywożonego produktu (np. żywe okazy, skórki, skóry, inne części ciała itp.).

12)Szczegółowy opis metod znakowania (np. opaski, metki, transpondery, marki itp.) stosowanych w odniesieniu do stada hodowlanego i potomstwa oraz w odniesieniu do rodzajów okazów (np. skóry, mięso, żywe zwierzęta itp.), które będą wywożone.

13)Opis obiektów, w których przebywają obecne i przewidywane stada hodowane w niewoli, w tym środki bezpieczeństwa zapobiegające ucieczkom i kradzieżom. Należy podać szczegółowe informacje na temat liczby i wielkości pomieszczeń przeznaczonych do hodowli i chowu, zbiorników, stawów, potencjał w zakresie inkubacji jaj, produkcji lub dostaw żywności, dostępności usług weterynaryjnych i prowadzenia rejestrów.

14)Opis strategii lub działań prowadzonych przez hodowlę w celu przyczynienia się do ochrony dzikich populacji gatunku.

15)Zapewnienie, że hodowla zostanie przeprowadzona na wszystkich etapach w sposób humanitarny (bez okrucieństwa)”.

(1)    Używać wyłącznie w połączeniu z innym kodem źródłowym.
Top