ANNEXE

SPÉCIFICATIONS TECHNIQUES

PARTIE A

CADRE D’ÉCHANTILLONNAGE ET ANALYSES

1.   Origine des isolats

Les États membres prélèvent des isolats représentatifs pour la surveillance de la RAM sur au moins chacune des populations animales et catégories de denrées alimentaires suivantes:

a)

isolats de Salmonella spp. provenant de: i) chaque population de poules pondeuses, poulets de chair et dindes d’engraissement ayant fait l’objet d’un prélèvement d’échantillons dans le cadre des programmes de contrôle nationaux établis conformément à l’article 5, paragraphe 1, du règlement (CE) no 2160/2003; ii) carcasses de poulets de chair et de dindes d’engraissement sur lesquelles des échantillons ont été prélevés à des fins d’analyse et de vérification du respect des conditions énoncées à l’annexe I, chapitre 2, point 2.1.5, du règlement (CE) no 2073/2005; iii) carcasses de porcs d’engraissement sur lesquelles des échantillons ont été prélevés à des fins d’analyse et de vérification du respect des conditions énoncées à l’annexe I, chapitre 2, point 2.1.4, du règlement (CE) no 2073/2005; iv) carcasses de bovins de moins d’un an lorsque la production de viandes de ces bovins dans l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an, sur lesquelles des échantillons ont été prélevés à des fins d’analyse et de vérification du respect des conditions énoncées à l’annexe I, chapitre 2, point 2.1.3, du règlement (CE) no 2073/2005;

b)	isolats de C. jejuni provenant d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des poulets de chair et des dindes d’engraissement lorsque la production de viande de dinde de l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an;

c)

isolats de bactéries E. coli commensales indicatrices provenant: i) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des poulets de chair et des dindes d’engraissement lorsque la production de viande de dinde de l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an; ii) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des porcs d’engraissement et des bovins de moins d’un an lorsque la production de viandes de ces bovins dans l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an;

d)

E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases provenant: i) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des poulets de chair et des dindes d’engraissement lorsque la production de viande de dinde de l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an; ii) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des porcs d’engraissement et des bovins de moins d’un an lorsque la production de viandes de ces bovins dans l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an; iii) d’échantillons de viandes fraîches porcine, bovine ou de poulets de chair collectés sur le marché du détail;

e)

lorsqu’un État membre décide de contrôler la présence de bactéries C. coli conformément à l’article 2, paragraphe 3, point a), isolats provenant: i) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des poulets de chair; ii) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des porcs d’engraissement;

f)

lorsqu’un État membre décide de contrôler la présence de bactéries E. faecalis et E. faecium conformément à l’article 2, paragraphe 3, point b), isolats provenant: i) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des poulets de chair et des dindes d’engraissement lorsque la production de viande de dinde dans l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an; ii) d’échantillons cæcaux collectés à l’abattage, prélevés sur des porcs d’engraissement et des bovins de moins d’un an lorsque la production de viande de ces bovins dans l’État membre est supérieure à 10 000 tonnes abattues par an.

L’autorité compétente peut réaliser des antibiogrammes pour vérifier la sensibilité aux antimicrobiens d’isolats obtenus par l’État membre à partir d’une autre source que celles visées aux points a) à f) ci-dessus, à titre volontaire, et les résultats peuvent être présentés distinctement conformément aux instructions énoncées dans l’annexe, partie B, point 2. Les exigences techniques spécifiques énoncées aux points 3, 4 et 5 s’appliquent toutefois à la réalisation de ces antibiogrammes.

2.   Fréquence, taille et plan d’échantillonnage

2.1.   Fréquence d’échantillonnage

Tous les deux ans, les États membres procèdent aux activités d’échantillonnage, de collecte d’échantillons et de vérification de la sensibilité aux antimicrobiens par la réalisation d’antibiogrammes prévues aux articles 2 à 4 pour chaque combinaison d’espèce bactérienne et de type d’échantillon des populations animales ou des catégories de denrées alimentaires énumérée au point 1 de la présente partie, ainsi qu’à la surveillance spécifique des bactéries Salmonella spp. et E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases conformément au point 4 de la présente partie dans le respect du système de rotation suivant:

a)

au cours des années 2014, 2016, 2018 et 2020 pour les poules pondeuses, les poulets de chair et leurs viandes fraîches ainsi que les dindes d’engraissement. La surveillance spécifique des bactéries commensales indicatrices E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases conformément au point 4.1 n’est toutefois pas obligatoire en 2014;

b)	au cours des années 2015, 2017 et 2019 pour les porcs, les bovins de moins d’un an, la viande porcine et la viande bovine.

2.2.   Taille d’échantillon

Les États membres réalisent des antibiogrammes pour 170 isolats de chaque combinaison d’espèce bactérienne et de type d’échantillon de population animale ou de catégorie de denrées alimentaires énumérée au point 1, a), b), c), e) et f). Le nombre d’isolats pour lesquels des antibiogrammes doivent être réalisés est toutefois limité à 85 (au lieu de 170) par combinaison spécifique correspondante dans les États membres dont la production est inférieure à 100 000 tonnes de viande de volaille abattues par an et à 100 000 tonnes de viande porcine abattues par an (1).

Dans les États membres qui disposent, au cours d’une année donnée, d’un plus grand nombre d’isolats pour certaines combinaisons d’espèce bactérienne et de type d’échantillon de population animale ou de catégorie de denrées alimentaires énumérées au point 1, a), b), c), e) et f), des antibiogrammes sont réalisés pour l’ensemble des isolats ou pour une sélection aléatoire représentative égale ou supérieure au nombre d’isolats requis conformément au premier alinéa.

Dans les États membres où, en raison d’une faible prévalence bactérienne ou d’un nombre restreint d’unités épidémiologiques, au cours d’une année donnée, le nombre d’isolats requis conformément au premier alinéa ne peut être atteint pour certaines des combinaisons d’espèce bactérienne et de type d’échantillon de population animale ou de catégorie de denrées alimentaires énumérées au point 1, a), b), c), e) et f), la sensibilité aux antimicrobiens est vérifiée par antibiogrammes pour l’ensemble des isolats disponibles à la fin de la période de surveillance.

Pour la surveillance spécifique des bactéries commensales indicatrices E. coli productrice de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases visée au point 4.1, les États membres analysent 300 échantillons de chacune des populations animales et catégories de denrées alimentaires énumérées au point 1 d). Dans les États membres dont la production est inférieure à 100 000 tonnes de viande de volaille abattues par an, 100 000 tonnes de viande porcine abattues par an et 50 000 tonnes de viande bovine abattues par an (2), le nombre d’échantillons à analyser est cependant limité à 150 (au lieu de 300) pour chaque combinaison spécifique correspondante.

2.3.   Plan d’échantillonnage

Les isolats pour lesquels un antibiogramme doit être réalisé conformément à l’article 2 sont obtenus à partir de programmes de surveillance basés sur un plan d’échantillonnage aléatoire. Les isolats bactériens visés à l’article 2 proviennent d’unités épidémiologiques sélectionnées de manière aléatoire ou d’une sélection aléatoire effectuée dans les abattoirs. Lorsque des échantillons sont prélevés sur des animaux malades, le résultat de l’antibiogramme est présenté distinctement conformément aux instructions énoncées dans la partie B, point 2.

L’autorité compétente veille à la randomisation du schéma d’échantillonnage et à son application correcte.

Lorsque des échantillons sont prélevés à l’abattoir conformément aux spécifications de la partie A, point 1, l’échantillonnage s’effectue auprès des abattoirs qui traitent au minimum 60 % de la population animale domestique spécifique de l’État membre en commençant par les abattoirs qui ont la plus grande capacité.

La surveillance prévue par la présente décision porte sur un isolat au maximum par espèce bactérienne provenant de la même unité épidémiologique par an. L’unité épidémiologique pour les poules pondeuses, les poulets de chair et les dindes d’engraissement est le cheptel. Pour les porcs d’engraissement et les bovins de moins d’un an, l’unité épidémiologique est l’exploitation.

2.3.1.   Prélèvement d’échantillons représentatifs à l’abattage

Le plan d’échantillonnage aléatoire est stratifié par abattoir en allouant le nombre d’échantillons d’animaux produits à l’échelle domestique collectés par abattoir proportionnellement à la capacité annuelle de l’abattoir.

Les échantillons collectés à l’abattage sont répartis uniformément sur chaque mois de l’année afin de couvrir les différentes saisons.

Seul un échantillon représentatif du contenu cæcal par unité épidémiologique, provenant soit d’une carcasse unique, soit d’un nombre de carcasses, est recueilli afin d’être pris en compte dans la stratification. Pour le reste, l’échantillonnage repose sur une sélection aléatoire en ce qui concerne le nombre de jours de prélèvement par mois et les lots à échantillonner au cours d’une journée d’échantillonnage donnée.

Le nombre d’échantillons biologiques à recueillir conformément à la partie A, point 1, a), b), c), e) et f), est déterminé de façon à atteindre le nombre requis d’isolats compte tenu de la prévalence de l’espèce bactérienne surveillée.

2.3.2.   Collection d’isolats représentatifs de Salmonella spp. prélevés dans le cadre des programmes de contrôle nationaux de Salmonella spp. dans des populations animales pertinentes et dans le cadre du règlement (CE) no 2073/2005

La détermination de la sensibilité antimicrobienne se limite à un seul isolat par sérovar de Salmonella provenant de la même unité épidémiologique par an.

Lorsque le nombre d’isolats de Salmonella disponibles par an par population animale dans l’État membre est supérieur au nombre d’isolats requis conformément au point 2.2, une sélection aléatoire d’au moins 170 ou 85 isolats est effectuée à partir de la collection d’isolats disponible annuellement dans l’État membre de manière à garantir la représentativité géographique et une répartition uniforme de la date d’échantillonnage sur l’année. En revanche, un antibiogramme de tous les isolats de Salmonella disponibles est réalisé en cas de faible prévalence.

2.3.3.   Prélèvement d’échantillons sur le marché de détail

Les États membres collectent sur le marché du détail des échantillons aléatoires de viande fraîche de poulets de chair, de viande porcine et de viande bovine sans présélectionner les échantillons sur la base de l’origine des denrées alimentaires.

3.   Agents antimicrobiens à inclure dans l’antibiogramme, seuils épidémiologiques et plages de concentration à utiliser pour l’antibiogramme d’isolats

Les États membres analysent les agents antimicrobiens et interprètent les résultats sur la base des seuils épidémiologiques et des plages de concentration qui sont définis dans les tableaux 1, 2 et 3 afin de déterminer la sensibilité des bactéries Salmonella spp., C. coli et C. jejuni, ainsi que des bactéries commensales indicatrices E. coli, E. faecalis et E. faecium.

Les méthodes de dilution appliquées sont conformes aux méthodes décrites par le comité européen des antibiogrammes (European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing — EUCAST) et l’institut des normes de laboratoire et d’analyses médicales (Clinical and Laboratory Standards Institute — CLSI) et reconnues en tant que méthode de référence internationale (norme ISO 20776-1:2006).

Tableau 1

Panel de substances antimicrobiennes à inclure dans la surveillance de la RAM, seuils de résistance selon EUCAST et plages de concentration à analyser pour Salmonella spp. et la bactérie commensale indicatrice E. coli (premier panel)

Agent antimicrobien	Espèce	Seuils d’interprétation de la RAM (mg/l)		Plage de concentrations (mg/l) (nombre de sources entre parenthèses)
		ECOFF (3)	Concentration critique clinique (4)
Ampicilline	Salmonella	> 8	> 8	1-64 (7)
	E. coli	> 8	> 8
Céfotaxime	Salmonella	> 0,5	> 2	0,25-4 (5)
	E. coli	> 0,25	> 2
Ceftazidime	Salmonella	> 2	> 4	0,5-8 (5)
	E. coli	> 0,5	> 4
Méropénème	Salmonella	> 0,125	> 8	0,03-16 (10)
	E. coli	> 0,125	> 8
Acide nalidixique	Salmonella	> 16	ND	4-128 (6)
	E. coli	> 16	ND
Ciprofloxacine	Salmonella	> 0,064	> 1	0,015-8 (10)
	E. coli	> 0,064	> 1
Tétracycline	Salmonella	> 8	ND	2-64 (6)
	E. coli	> 8	ND
Colistine	Salmonella	> 2	> 2	1-16 (5)
	E. coli	> 2	> 2
Gentamicine	Salmonella	> 2	> 4	0,5-32 (7)
	E. coli	> 2	> 4
Triméthoprime	Salmonella	> 2	> 4	0,25-32 (8)
	E. coli	> 2	> 4
Sulfaméthoxazole	Salmonella	ND	ND	8-1 024 (8)
	E. coli	> 64	ND
Chloramphénicol	Salmonella	> 16	> 8	8-128 (5)
	E. coli	> 16	> 8
Azithromycine	Salmonella	ND	ND	2-64 (6)
	E. coli	ND	ND
Tigécycline	Salmonella	> 1 (5)	> 2 (5)	0,25-8 (6)
	E. coli	> 1	> 2
ND: données non disponibles

Tableau 2

Panel de substances antimicrobiennes à inclure dans la surveillance de la RAM, seuils d’interprétation de la résistance selon EUCAST et plages de concentration à tester pour C. jejuni et C. coli

Agent antimicrobien	Espèce	Seuils d’interprétation de la RAM (mg/l)		Plage de concentrations (mg/l) (nombre de sources entre parenthèses)
		ECOFF (6)	Concentration critique clinique (7)
Érythromycine	C. jejuni	> 4	> 4	1-128 (8)
	C. coli	> 8	> 8
Ciprofloxacine	C. jejuni	> 0,5	> 0,5	0,12-16 (8)
	C. coli	> 0,5	> 0,5
Tétracycline	C. jejuni	> 1	> 2	0,5-64 (8)
	C. coli	> 2	> 2
Gentamicine	C. jejuni	> 2	ND	0,12-16 (8)
	C. coli	> 2	ND
Acide nalidixique	C. jejuni	> 16	ND	1-64 (7)
	C. coli	> 16	ND
Streptomycine (8)	C. jejuni	> 4	ND	0,25-16 (7)
	C. coli	> 4	ND
ND: données non disponibles

Tableau 3

Panel de substances antimicrobiennes à inclure dans la surveillance de la RAM, seuils de résistance selon EUCAST et plages de concentration à utiliser pour les analyses de E. faecalis et E. faecium

Agent antimicrobien	Espèce	Seuils d’interprétation de la RAM (mg/l)		Plage de concentrations (mg/l) (nombre de sources entre parenthèses)
		ECOFF (9)	Concentration critique clinique (10)
Gentamicine	E. faecalis	> 32	ND	8-1 024 (8)
	E. faecium	> 32	ND
Chloramphénicol	E. faecalis	> 32	ND	4-128 (6)
	E. faecium	> 32	ND
Ampicilline	E. faecalis	> 4	> 8	0,5-64 (8)
	E. faecium	> 4	> 8
Vancomycine	E. faecalis	> 4	> 4	1-128 (8)
	E. faecium	> 4	> 4
Téicoplanine	E. faecalis	> 2	> 2	0,5-64 (8)
	E. faecium	> 2	> 2
Érythromycine	E. faecalis	> 4	ND	1-128 (8)
	E. faecium	> 4	ND
Quinupristine/ Dalfopristine	E. faecalis	ND	ND	0,5-64 (8)
	E. faecium	> 1	> 4
Tétracycline	E. faecalis	> 4	ND	1-128 (8)
	E. faecium	> 4	ND
Tigécycline	E. faecalis	> 0,25	> 0,5	0,03-4 (8)
	E. faecium	> 0,25	> 0,5
Linézolide	E. faecalis	> 4	> 4	0,5-64 (8)
	E. faecium	> 4	> 4
Daptomycine	E. faecalis	> 4	ND	0,25-32 (8)
	E. faecium	> 4	ND
Ciprofloxacine	E. faecalis	> 4	ND	0,12-16 (8)
	E. faecium	> 4	ND
ND: données non disponibles

4.   Surveillance spécifique des bactéries Salmonella et E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases

4.1.   Méthode applicable à la détection des bactéries E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases chez les poulets de chair, les dindes et porcs d’engraissement, les bovins de moins d’un an et sur les viandes fraîches de poulet de chair, la viande porcine et la viande bovine

La part d’échantillons contenant des E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases dans les échantillons cæcaux prélevés sur des poulets de chair, des dindes et porcs d’engraissement, des bovins de moins d’un an, des viandes fraîches de poulet de chair, de la viande porcine et de la viande bovine conformément au point 1 d) est estimée sur base de la méthode suivante.

Pour la détection d’E. coli productrices de BLSE ou d’AmpC, la méthode débute par une phase de préenrichissement, suivie de l’inoculation sur une gélose McConkey contenant une céphalosporine de la troisième génération dans une concentration sélective conforme à la version la plus récente du protocole détaillé de normalisation du laboratoire de référence de l’Union européenne pour la résistance aux antimicrobiens (11). L’espèce microbienne E. coli est identifiée à l’aide d’une méthode appropriée.

En fonction des conditions épidémiologiques, l’État membre peut décider d’analyser en parallèle un disque sélectif additionnel inhibant la croissance des E. coli productrices d’AmpC afin de faciliter la détection spécifique des E. coli productrices de BLSE. Le cas échéant, les résultats du disque sélectif additionnel inhibant la croissance des E. coli productrices d’AmpC font l’objet d’une section distincte dans le rapport conformément aux instructions énoncées dans la partie B, point 2.

Les États membres peuvent décider de rechercher les micro-organismes producteurs de carbapénémases en commençant par un préenrichissement sur gélose sélective, suivi d’un isolement-étalement sélectif dans un milieu contenant du carbapénème conformément à la version la plus récente du protocole détaillé de normalisation du laboratoire de référence de l’Union européenne pour la RAM (12).

Tout isolat d’E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases présumé, obtenu à partir de chaque échantillon cæcal et échantillon de viande positifs est soumis à analyse sur le premier panel d’agents antimicrobiens conformément au tableau 1 et fait ensuite l’objet d’un antibiogramme élargi conformément au point 4.2 en cas de résistance au céfotaxime, à la ceftazidime ou au méropénème constatée sur la base des critères d’interprétation (seuils épidémiologiques) cités dans le tableau 1.

4.2.   Méthode applicable à la caractérisation et à la classification précises d’isolats de Salmonella spp. et d’E. coli présentant une résistance aux céphalosporines de la troisième génération ou au méropénème

Tout isolat d’E. coli productrices de BLSE, d’AmpC ou de carbapénémases présumé, identifié grâce à l’isolement-étalement sélectif décrit au point 4.1, ainsi que tous les isolats de Salmonella spp. et E. coli sélectionnés de façon aléatoire qui, après avoir été analysés au moyen du premier panel d’agents antimicrobiens conformément au tableau 1, présentent une résistance au céfotaxime, à la ceftazidime ou au méropénème sont également contrôlés avec un second panel de substances antimicrobiennes conformément au tableau 4. Ce panel comprend la céfoxitine, la céfépime et un test de synergie à l’acide clavulanique combiné respectivement à du céfotaxime et à de la ceftazidime, permettant de détecter la production de BLSE et d’AmpC. Le second panel contient également de l’imipénème, du méropénème et de l’ertapénème afin de vérifier le phénotype des bactéries productrices de carbapénémases présumées.

Tableau 4

Panel de substances antimicrobiennes, seuils épidémiologiques (ECOFF) et points critiques de résistance clinique selon EUCAST et plages de concentration à utiliser uniquement pour l’analyse des isolats de Salmonella spp. et d’E. coli commensales indicatrices résistant au céfotaxime, à la ceftazidime ou au méropénème (deuxième panel)

Agent antimicrobien	Espèce	Seuils d’interprétation de la RAM (mg/l)		Plage de concentrations (mg/l) (nombre de sources entre parenthèses)
		ECOFF (13)	Concentration critique clinique (14)
Céfoxitine	Salmonella	> 8	ND	0,5-64 (8)
	E. coli	> 8	ND
Céfépime	Salmonella	ND	ND	0,06-32 (10)
	E. coli	> 0,125	> 4
Céfotaxime + acide clavulanique (15)	Salmonella	ND (16)	ND (16)	0,06-64 (11)
	E. coli	ND (16)	ND (16)
Ceftazidime + acide clavulanique (15)	Salmonella	ND (16)	ND (16)	0,125-128 (11)
	E. coli	ND (16)	ND (16)
Méropénème	Salmonella	> 0,125	> 8	0,03-16 (10)
	E. coli	> 0,125	> 8
Temocilline	Salmonella	ND	ND	0,5-64 (8)
	E. coli	ND	ND
Imipénème	Salmonella	> 1	> 8	0,12-16 (8)
	E. coli	> 0,5	> 8
Ertapénème	Salmonella	> 0,06	> 1	0,015-2 (8)
	E. coli	> 0,06	> 1
Céfotaxime	Salmonella	> 0,5	> 2	0,25-64 (9)
	E. coli	> 0,25	> 2
Ceftazidime	Salmonella	> 2	> 4	0,25-128 (10)
	E. coli	> 0,5	> 4
ND: données non disponibles

4.3.   Méthode quantitative applicable à l’évaluation de la part d’E. coli productrices de BLSE ou d’AmpC

Les États membres, en particulier ceux qui ont détecté une prévalence élevée d’E. coli productrices de BLSE ou d’AmpC en recourant à la méthode de détection présentée au point 4.1, peuvent caractériser la part d’E. coli productrices de BLSE ou d’AmpC sur l’ensemble de la population d’E. coli.

Cette caractérisation s’effectue par l’énumération des E. coli productrices de BLSE ou d’AmpC et des E. coli totales présentes dans un échantillon en utilisant des méthodes de dilution, suivies d’un étalement sur plaque sur des milieux sélectifs et non sélectifs conformément à la version la plus récente du protocole détaillé du laboratoire de référence de l’Union européenne pour la RAM (17).

5.   Contrôle de qualité et conservation des isolats

Les laboratoires désignés par l’autorité compétente pour réaliser des antibiogrammes pour les isolats faisant l’objet du programme de surveillance harmonisée participent à un système d’assurance de qualité qui comprend un essai d’aptitude organisé soit au niveau national, soit au niveau de l’Union pour l’identification, le typage et le contrôle de la sensibilité des bactéries ciblées par la surveillance harmonisée de la RAM.

Les isolats sont conservés par les laboratoires nationaux de référence pour la RAM à une température de – 80 °C pendant cinq ans au minimum. D’autres méthodes de conservation peuvent être choisies en guise d’alternative pour autant qu’elles garantissent la viabilité et l’absence d’altération des propriétés des souches.

PARTIE B

RAPPORTS

1.   Dispositions générales concernant la présentation des rapports sur les données

Lorsque la RAM est surveillée par l’autorité compétente à partir d’isolats que celle-ci a obtenus à d’autres points de la chaîne alimentaire que ceux visés dans la partie A, point 1, mais conformément aux spécifications techniques visées dans la partie A, points 3, 4 et 5, les résultats de cette surveillance de la RAM font l’objet d’un rapport conformément aux instructions de la présente partie, point 2, mais dans une section distincte, et le nombre d’isolats à analyser conformément à la partie A, point 2, reste inchangé.

2.   Informations à mentionner pour chaque échantillon individuel

Le rapport mentionne les informations visées aux points 2.1 à 2.6 pour chaque isolat individuel en tenant compte distinctement de chacune des combinaisons d’espèce bactérienne et population animale et combinaisons d’espèce bactérienne et denrée alimentaire visées à la partie A, point 1.

Les États membres présentent les résultats de la surveillance harmonisée de la RAM prévue dans la présente décision sous la forme de données brutes basées sur les isolats en utilisant le dictionnaire des données et les formulaires de collecte de données fournis par l’EFSA (18).

2.1.   Description générale de la mise en œuvre de la surveillance de la RAM

—	Description des plans d’échantillonnage et procédures de stratification et de randomisation par population animale et par catégorie de denrées alimentaires

2.2.   Informations générales

—	Identifiant ou code de l’isolat

—	Espèce bactérienne

—	Sérovar (pour Salmonella spp.)

—	Lysotypie de Salmonella Enteriditis et Salmonella Typhimurium (facultatif)

2.3.   Informations spécifiques concernant l’échantillonnage

—	Population d’animaux producteurs d’aliments ou catégorie de denrées alimentaires

—	Point de prélèvement

—	Type d’échantillon

—	Échantillonneur

—	Stratégie d’échantillonnage

—	Date d’échantillonnage

—	Date d’isolement

2.4.   Informations spécifiques concernant l’antibiogramme

—	Identifiant ou code de l’isolat donné par le laboratoire ayant exécuté l’antibiogramme de l’isolat

—	Date de l’antibiogramme

—	Substance antimicrobienne

2.5.   Informations spécifiques concernant les résultats de la méthode de dilution

—	Valeur (en mg/l) de la concentration minimale inhibitrice (CMI)

2.6.   Résultats des tests de synergie

—	Tests de synergie à l’acide clavulanique pour la ceftazidime

—	Tests de synergie à l’acide clavulanique pour le céfotaxime

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(1)  Sur la base des données les plus récentes disponibles auprès d’Eurostat (http://epp.eurostat.ec.europa.eu).

(2)  voir note 1 de bas de page.

(3)  Seuils épidémiologiques selon EUCAST

(4)  Concentrations critiques de la résistance clinique selon EUCAST

(5)  Données disponibles auprès de l’EUCAST pour Salmonella Enteriditis, Typhimurium, Typhi et Paratyphi

ND: données non disponibles

(6)  Seuils épidémiologiques selon EUCAST

(7)  Concentrations critiques de la résistance clinique selon EUCAST

(8)  Sur une base volontaire

ND: données non disponibles

(9)  Seuils épidémiologiques selon EUCAST

(10)  Concentrations critiques de la résistance clinique selon EUCAST

ND: données non disponibles

(11)  www.crl-ar.eu

(12)  Voir note 3 de bas de page.

(13)  Seuils épidémiologiques selon EUCAST

(14)  Concentrations critiques de la résistance clinique selon EUCAST

ND: données non disponibles

(15)  4 mg/l d’acide clavulanique

(16)  Les valeurs sont à comparer à celles du céfotaxime et de la ceftazidime et à interpréter conformément aux lignes directrices du CLSI ou de l’EUCAST concernant les tests de synergie.

(17)  Voir note 3 de bas de page.

(18)  www.efsa.europa.eu