ANHANG II
Leitlinien für die Durchführung von Programmen zur Überwachung der aviären Influenza bei Wildvögeln in den Mitgliedstaaten
A. Ziele, allgemeine Vorschriften und Kriterien für die Überwachung
A.1. Ziele
Bei der virologischen Überwachung der aviären Influenza bei Wildvögeln geht es darum, die Übertragung von AI-Viren (LPAI und HPAI) nach Möglichkeit zu verhindern, und zwar durch
|
—
|
die frühe Entdeckung von HPAI H5N1 durch Untersuchung einer höheren Inzidenz von Morbidität und Mortalität bei Wildvögeln, vor allem bei einzelnen Risikoarten (higher risk species);
|
|
—
|
die Ausweitung der Überwachung von lebenden und toten Wildvögeln bei Nachweis von HPAI H5N1, um festzustellen, ob andere Wildvogelarten als symptomfreie Träger oder Zwischenwirte (bridge species) auftreten können (siehe Abschnitt E dieses Anhangs);
|
|
—
|
die Fortführung einer Baseline-Überwachung verschiedener Arten freilebender Zugvögel als Teil der fortlaufenden Überwachung von LPAI-Viren. Proben werden vor allem bei Gänsevögeln (Anseriformes) sowie Wat- und Möwenvögeln (Charadriiformes) gezogen, um zu ermitteln, ob diese LPAI-Viren der Subtypen H5 und H7 tragen (dabei würden in jedem Fall auch HPAI H5N1 und andere HPAI nachgewiesen werden). Risikoarten müssen ganz besonders gezielt untersucht werden.
|
A2. Allgemeine Bedingungen und Kriterien
|
1.
|
Die Probenahme geht nicht über den 31. Dezember des Jahres der Programmdurchführung hinaus.
|
|
2.
|
Die Proben werden in nationalen Laboratorien der Mitgliedstaaten für aviäre Influenza (NL) oder in von den zuständigen Behörden zugelassenen und dem NL unterstehenden anderen Untersuchungseinrichtungen analysiert.
|
|
3.
|
Alle Befunde werden an das Gemeinschaftliche Referenzlabor für aviäre Influenza (GRL) weitergeleitet, das diese zusammenträgt. Ein guter Informationsfluss muss gewährleistet sein. Das GRL leistet technische Hilfe und hält einen größeren Vorrat an Diagnosereagenzien bereit.
|
|
4.
|
Sämtliche bei Wildvögeln isolierten AI-Viren sind nach den Gemeinschaftsvorschriften an das GRL zu übermitteln, es sei denn, es wurde eine Ausnahme gemäß Kapitel V Abschnitt 4 (Differenzialdiagnose) des Handbuchs für AI-Diagnose in der Entscheidung 2006/437/EG gewährt. Viren des H5/H7-Subtyps werden unverzüglich übermittelt und nach dem in dem Diagnosehandbuch beschriebenen Standardverfahren (Nukleotid-Sequenzanalyse/IVPI) charakterisiert.
|
B. AI-Überwachung bei Wildvögeln
Konzept und Durchführung
Bei der Planung der Überwachung, der Artenbestimmung und der Optimierung der Probenahme ist auf enge Zusammenarbeit mit Tierseuchenspezialisten und Ornithologen sowie den zuständigen Naturschutzbehörden zu achten. Die Überwachung ist so zu gestalten, dass bei der Auswahl der zu beprobenden Arten die besonderen Gegebenheiten des Landes im Hinblick auf deren Dominanz und die Größe der Vogelbestände berücksichtigt werden. Bei der Probenahme ist auch den jahreszeitlich bedingten Zugmustern Rechnung zu tragen, die sich zwischen den Mitgliedstaaten unterscheiden können. Zu berücksichtigen sind zudem die Verhaltensweisen der Vogelarten in Bezug auf ihre Zugrouten, Lebensräume, Lebensformen und ihre Vermischung während des Vogelzugs sowie die Ergebnisse früherer Überwachungsprogramme zwischen 2003 und 2006. Die Arbeitsgruppe für die AI-Überwachung bei Wildvögeln, die alle neuen Daten sofort analysiert, wird zudem für einen kontinuierlichen Überblick und Rückmeldung sorgen.
In Bezug auf H5N1 HPAI werden alle diesen Faktoren berücksichtigt, um zu ermitteln, wie groß die Ansteckungsgefahr von Wildvögeln bei erkranktem Geflügel und Wildvögeln in Ausbruchsgebieten und wie wahrscheinlich der Kontakt zwischen Wildvögeln und Hausgeflügel in den Geflügelhaltungen in den verschiedenen Mitgliedstaaten ist.
Für die Bewertung dieser Wahrscheinlichkeit können die Mitgliedstaaten bei ihren lokalen Risikobewertungen die Entscheidungsbäume und Tabellen im Gutachten der EFSA (1) benutzen, die in Zusammenarbeit mit der Generaldirektion Umwelt der Europäischen Kommission erstellt wurden und es ermöglichen, die Situation durch eine enge Zusammenarbeit und den Meinungsaustausch zwischen den Mitgliedstaaten beständig anzupassen.
Die Zusammenarbeit mit Vogelschutzvereinen/Vogelbeobachtungsstationen und Beringungszentralen wird gefördert. Die Proben werden gegebenenfalls von Personal dieser Einrichtungen, von Jägern oder von vogelkundigen Personen entnommen.
|
1.
|
Die passive Überwachung erkrankter und verendeter Wildvögel konzentriert sich auf:
|
a)
|
Gebiete mit erhöhter Inzidenz der Morbidität und Mortalität bei Wildvögeln;
|
|
b)
|
Küsten und Ufergebiete an stehenden und fließenden Gewässern, in denen verendete Vögel entdeckt wurden, insbesondere wenn sich in der Nähe Geflügelhaltungsbetriebe befinden;
|
|
c)
|
Vögel, die den in Abschnitt D genannten Risikoarten angehören, und sonstige Wildvögel, die in deren unmittelbarer Nachbarschaft leben.
|
|
|
2.
|
Untersuchungen von lebenden und verendeten Wildvögeln in Gebieten mit H5N1-Fällen konzentrieren sich zudem bevorzugt auf:
|
a)
|
Wildvögel oder Geflügel zur Ermittlung möglicher symptomfreier Träger;
|
|
b)
|
Vögel in Gebieten, mit denen epidemiologische Zusammenhänge bestehen;
|
|
c)
|
Vögel, die direkt in Kontakt mit Geflügelhaltungsbetrieben kommen können (Schutzzone, Überwachungszone und Gebiet B) und als Zwischenwirte dienen können, vor allem die in Abschnitt E genannten Vogelarten.
|
|
|
3.
|
Die aktive Überwachung lebender und klinisch gesunder und/oder klinisch erkrankter, verletzter oder gejagter (2) Vögel konzentriert sich auf:
|
a)
|
Zugvögel der Gattungen Gänsevögel (Anseriformes) und Wat- bzw. Möwenvögel (Charadriiformes);
|
|
b)
|
ausgewiesene Bereiche, in denen große Scharen von Zugvögeln auftreten und wo sich verschiedene Arten von Zugvögeln mischen, insbesondere, wenn diese Gebiete in der Nähe von Geflügelhaltungsbetrieben liegen;
|
|
c)
|
eine Auswahl von Risikoarten (3).
|
|
Probenahmeverfahren
|
1.
|
Oropharynxabstriche und Kloakenabstriche für virologische Untersuchungen werden von augenscheinlich gesunden frei lebenden Vögeln genommen. Sollte die Entnahme von Kloakenproben bei lebenden Vögeln nicht möglich sein, können stattdessen sorgfältig gesammelte frische Fäkalproben übersandt werden. Bei Proben aus Gebieten, die von mehreren Vogelarten als Lebensraum genutzt werden, muss jedoch eine Rückverfolgung gewährleistet sein.
|
|
2.
|
Neben Kloakenabstrichen und Luftröhren-/Oropharynxabstrichen sind zur Virusisolierung und zum molekularen Nachweis (PCR) auch Gewebeproben (hauptsächlich Gehirn-, Herz-, Lungen-, Luftröhren-, Nieren- und Eingeweideproben) von verendet aufgefundenen oder erlegten Wildvögeln zu untersuchen.
|
|
3.
|
Bei der Lagerung und beim Transport der Proben ist besonders sorgfältig vorzugehen. Die Abstriche müssen sofort auf Eis oder mit Gefriergelpackungen gekühlt und schnellstmöglich in das Labor gebracht werden. Falls nicht unbedingt erforderlich, sollten die Proben nicht eingefroren werden. Sofern verfügbar, sind die Abstriche in ein antibiotisches oder spezifisches Virustransportmedium zu geben, so dass sie von diesem vollständig bedeckt sind. Eine Kühlung muss in jedem Fall erfolgen, der Transport in einem Medium ist eine zusätzliche Maßnahme. Ist kein solches Medium vorhanden, müssen die Abstriche wieder in ihr Behältnis gegeben und in trockenem Zustand übersandt werden. Können die Proben nicht innerhalb von 48 Stunden bei 4 ° C in einem Transportmedium beim Labor abgeliefert werden, so sind sie unmittelbar einzufrieren, zu lagern und anschließend auf Trockeneis zu transportieren. Die Lagerung und die Beförderung von Proben können durch eine Vielzahl von Faktoren beeinflusst werden, weshalb eine zweckgeeignete Beförderungsmethode zu wählen ist.
|
|
4.
|
Die Proben werden nach dem Verfahren entnommen, das in dem Handbuch für die AI-Diagnose (Entscheidung 2006/437/EG) für die Bestätigung und Differenzialdiagnose der aviären Influenza beschrieben ist.
|
C. Laboruntersuchungen
|
1.
|
Die Laboruntersuchungen werden nach den Verfahren durchgeführt, die in dem Handbuch für die AI-Diagnose (Entscheidung 2006/437/EG) für die Bestätigung und Differenzialdiagnose der aviären Influenza beschrieben sind.
|
|
2.
|
Sind Laboruntersuchungen geplant, die weder im Diagnosehandbuch noch im OIE-Handbuch für Landtiere vorgesehen sind, so übermitteln die Mitgliedstaaten dem GRL zeitgleich mit der Vorlage ihrer Programme bei der Kommission alle erforderlichen Validierungsdaten.
|
|
3.
|
Alle bei der Überwachung gesammelten Proben werden nach Möglichkeit umgehend mit Molekulartests und nach dem Verfahren des Diagnosehandbuchs (Entscheidung 2006/437/EG) untersucht. Molekulare Techniken werden nur in Laboratorien angewandt, die eine Qualitätssicherung garantieren können und nach vom GRL für aviäre Influenza anerkannten Methoden arbeiten. Zudem müssen die angewandten Methoden in den letzten vergleichenden Ringtests der nationalen Laboratorien annehmbar abgeschnitten haben. Eine Untersuchung mittels M-Gen-PCR wird empfohlen; bei Positivbefund ist unverzüglich (auf jeden Fall innerhalb von zwei Wochen) der Spaltbereich zu analysieren, um festzustellen, ob ein Motiv eines hoch pathogenen AI-Stamms (HPAI) oder eines gering pathogenen AI-Stamms (LPAI) vorliegt. Bei Nachweis von H5 HPAI ist direkt eine weitere Analyse vorzunehmen, um den N-Typ zu bestimmen (auch wenn damit nur der Ausschluss von N1 möglich ist).
|
|
4.
|
Im Labor können bis zu fünf gleichzeitig entnommene Proben von derselben Tierart vom selben Ort gepoolt werden, wenn sichergestellt ist, dass bei positivem Befund die einzelnen Proben ermittelt und erneut untersucht werden können.
|
|
5.
|
Eine serologische Überwachung empfiehlt sich bei AI-Untersuchungen von Wildvögeln nicht, weil serologische Methoden nicht zwischen HP- und LP-Stämmen unterscheiden können und der Nachweis von Antikörpern keine Rückschlüsse auf den wahrscheinlichen Ansteckungsort von Wildvögeln zulässt. Allerdings kann eine serologische Überwachung bei der Suche nach der Art der Stand- oder Zugvögel wichtig sein, in der H5-/H7-Viren prävalent (oder endemisch) sind/waren. Solche Analysen führen nur spezialisierte Labors durch, die eine sorgfältig ausgewählte Palette von Antigenen benutzen, die verlässlich den Nachweis von Hämagglutinin-spezifischen Antikörpern ermöglichen (d. h. durch Ausschluss der Interferenz mit N-spezifischen Antikörpern).
|
Liste von Wildvogelarten mit erhöhtem AI-Risiko (*1)
|
Gewöhnlicher Name
|
Wissenschaftlicher Name
|
|
Zwergschwan
|
Cygnus columbianus
|
|
Singschwan
|
Cygnus cygnus
|
|
Höckerschwan
|
Cygnus olor
|
|
Gänse
|
|
|
Kurzschnabelgans
|
Anser brachyrhynchus
|
|
Saatgans
|
Anser fabalis
|
|
Blässgans (europäische Rasse)
|
Anser albifrons albifrons
|
|
Zwerggans
|
Anser erythropus
|
|
Graugans
|
Anser anser
|
|
Nonnengans (Weißwangengans)
|
Branta leucopsis
|
|
Ringelgans
|
Branta bernicla
|
|
Rothalsgans
|
Branta ruficollis
|
|
Kanadagans
|
Branta canadensis
|
|
Enten
|
|
|
Pfeifente
|
Anas penelope
|
|
Krickente
|
Anas crecca
|
|
Stockente
|
Anas platyrhynchos
|
|
Spießente
|
Anas acuta
|
|
Knäkente
|
Anas querquedula
|
|
Löffelente
|
Anas clypeata
|
|
Marmelente
|
Marmaronetta angustirostris
|
|
Kolbenente
|
Netta rufina
|
|
Tafelente
|
Aythya ferina
|
|
Reiherente
|
Aythya fuligula
|
|
Watvögel
|
|
|
Kiebitz
|
Vanellus vanellus
|
|
Goldregenpfeifer
|
Pluvialis apricaria
|
|
Uferschnepfe
|
Limosa limosa
|
|
Kampfläufer
|
Philomachus pugnax
|
|
Möwen
|
|
|
Lachmöwe
|
Larus ridibundus
|
|
Sturmmöwe
|
Larus canus
|
Liste von Vögeln in Nachbarschaft von Hausgeflügel (*2)
|
Gewöhnlicher Name
|
Wissenschaftlicher Name
|
Wahrscheinlichkeit des Kontakts mit Geflügel
|
| Gruppe 1. Von der Geflügelhaltung in Europa nicht zu trennende Arten
|
|
|
Hausgans
|
Anser anser domesticus
|
hoch
|
|
Stockente
|
Anas platyrhynchos
|
hoch
|
|
Moschusente
|
Cairina moschata
|
hoch
|
|
Wildtaube
|
Columba livia
|
hoch
|
|
Haussperling
|
Passer domesticus
|
hoch
|
| Gruppe 2. Arten, die in Nordeuropa Freiflächen mit Hausgeflügel teilen
|
|
|
Goldregenpfeifer
|
Pluvialis apricaria
|
niedrig
|
|
Kiebitz
|
Vanellus vanellus
|
mittel
|
|
Lachmöwe
|
Larus ridibundus
|
hoch
|
|
Sturmmöwe
|
Larus canus
|
hoch
|
|
Silbermöwe
|
Larus argentatus
|
niedrig
|
|
Ringeltaube
|
Columba palumbus
|
hoch
|
|
Türkentaube
|
Streptopelia decaocto
|
hoch
|
|
Fasan
|
Phasianus colchicus
|
hoch
|
|
Lerchenarten
|
Alauda & Galerida spp.
|
niedrig
|
|
Pieper
|
|
niedrig
|
|
Bachstelze
|
|
mittel
|
|
Wacholderdrossel
|
Turdus pilaris
|
mittel
|
|
Rotdrossel
|
Turdus iliacus
|
mittel
|
|
Elster
|
Pica pica
|
hoch
|
|
Dohle
|
Corvus monedula
|
hoch
|
|
Saatkrähe
|
Corvus frugilegus
|
mittel
|
|
Aaskrähe
|
Corvus corone
|
mittel
|
|
Rabe
|
Corvus corax
|
niedrig
|
|
Star
|
Sturnus vulgaris
|
hoch
|
|
Einfarbstar
|
Sturnus unicolor
|
hoch
|
|
Haussperling
|
Passer domesticus
|
hoch
|
|
Feldsperling
|
Passer montanus
|
hoch
|
|
Finken
|
|
mittel
|
|
Ammer
|
Miliaria, Emberiza spp.
|
mittel
|
| Gruppe 3. Arten, die in Nordeuropa Feuchtgebiete mit Zuchtwasservögeln teilen
|
|
|
Reiher
|
Egretta spp.
|
niedrig
|
|
Reiher
|
Ardea uund andere spp.
|
mittel
|
|
Kormoran
|
Phalacrocorax carbo
|
mittel
|
|
Störche
|
Ciconia spp.
|
niedrig
|
|
Höckerschwan
|
Cygnus olor
|
mittel
|
|
Graugans
|
Anser anser
|
mittel
|
|
Kanadagans
|
Branta canadensis
|
niedrig
|
|
Enten
|
Anas & Aythya spp.
|
niedrig
|
|
Stockente
|
Anas platyrhynchos
|
hoch
|
|
Blässhuhn
|
Fulica atra
|
mittel
|
|
Teichhuhn
|
Gallinula chloropus
|
mittel
|
(1) Wissenschaftliche Stellungnahme „Migratory birds and their possible role in the spread of highly pathogenic avian influenza“ (EFSA, 12. Mai 2006).
(2) Im Sinne der Richtlinie 79/409/EWG des Rates über die Erhaltung der wild lebenden Vogelarten.
(3) Auswahl wird von der Generaldirektion Umwelt der Europäischen Kommission getroffen.
(*1) Diese Liste ist nicht erschöpfend und soll nur dazu dienen, Zugvogelarten zu nennen, die aufgrund ihrer Zugmuster unter Einbeziehung von Gebieten, in denen H5N1 HPAI bei Wildvögeln oder Geflügel aufgetreten ist, die aviäre Influenza in die Gemeinschaft einschleppen könnten. Sie beruht auf der wissenschaftlichen Stellungnahme „Migratory birds and their possible role in the spread of highly pathogenic avian influenza“ des Gremiums für Tiergesundheit und Tierschutz der EFSA vom 12. Mai 2006 sowie der Arbeit des Ausschusses ORNIS und von Auftragnehmern der Generaldirektion Umwelt der Europäischen Kommission. Eine Änderung dieser Liste ist möglich, sobald Ergebnisse weiterer wissenschaftlicher Untersuchungen vorliegen und die nationalen Behörden Risikobewertungen unter Berücksichtigung der ornithologischen Verhältnisse in ihrem Land durchgeführt haben.
(*2) Diese Liste ist nicht erschöpfend und soll lediglich dazu dienen, europäische Standvogel- oder Zugvogelarten zu ermitteln, die in der Nachbarschaft von Hausgeflügel leben (vor allem in Nordwesteuropa) und die theoretisch HPAI H5N1 von potenziell symptomfrei infizierten Wildvögeln (Zwischenwirten) übertragen können. Sie beruht auf der wissenschaftlichen Stellungnahme „Migratory birds and their possible role in the spread of highly pathogenic avian influenza“ des Gremiums für Tiergesundheit und Tierschutz der EFSA vom 12. Mai 2006 sowie der Arbeit des Ausschusses ORNIS und von Auftragnehmern der Generaldirektion Umwelt der Europäischen Kommission. Eine Änderung dieser Liste ist möglich, sobald Ergebnisse weiterer wissenschaftlicher Untersuchungen vorliegen. Die GD Umwelt hat insbesondere Wetlands International und EURING beauftragt, eine erste Analyse von Risikoarten und -gebieten im Licht der H5N1-Ausbrüche in Europa im Jahr 2006 zu überprüfen, aktualisieren und erweitern und weitere Risikoarten zu ermitteln, die als Zwischenwirt zwischen Wildvögeln und Geflügel und/oder Menschen in verschiedenen europäischen Regionen dienen können. Die Ergebnisse dürften bis Ende Juni 2007 vorliegen.
(http://ec.europa.eu/environment/nature/nature_conservation/focus_wild_birds/avian_influenza/pdf/avian_influenza_report.pdf). Dann sollte eine wesentlich verlässlichere vorläufige Liste von Risikoarten und der Gefahr des Kontakts mit Geflügel in der EU vorliegen und somit eine wesentlich gezieltere Vorgehensweise ermöglichen.
